Indlægsseddel til QuantiFERON -CMV ELISA 2 96

Transkript

1 Indlægsseddel til QuantiFERON -CMV ELISA 2 96 Interferon-gamma (IFN-γ)-test i fuldblod til måling af responser på humane cytomegalovirus-peptidantigener Til in vitro-diagnostisk brug Cellestis, a QIAGEN Company Level 2, Office Tower 2, Chadstone Centre 1341 Dandenong Road, Chadstone, Victoria, 3148, Australien Tlf.: (Australien) , (Europa) QIAGEN GmbH, QIAGEN Strasse Hilden, TYSKLAND Rev DA

2

3 Indhold Indledning 4 Analyseprincipper 5 Påkrævet tid til udførelse af analysen 5 Reagenser og opbevaring 6 Nødvendige materialer, som ikke medfølger 7 Opbevaring og håndtering 7 Advarsler og forholdsregler 8 Prøveindsamling og -håndtering 9 Brugsvejledning 11 Stadie 1 Inkubering af blod og opsamling af plasma 11 Stadie 2 QuantiFERON-CMV-ELISA for humant IFN-γ 11 Beregninger og testfortolkning 15 Fortolkning af resultater 16 Begrænsninger 16 Forventede værdier 17 Ydelsesegenskaber 19 Klinisk ydeevne 19 Analysetærskel 19 Kliniske undersøgelser 20 Specificitet 20 Følsomhed 20 Undersøgelser, som fremhæver den kliniske anvendelighed 20 Internationale konsensusretningslinjer for håndtering af cytomegalovirus ved transplantation af hele organer 23 Analysens ydelseskarakteristika 24 Teknisk information 25 Ubestemmelige resultater 25 Koagulerede plasmaprøver 25 Fejlfindingsvejledning 26 Litteraturliste 28 Symboler 29 Kontaktoplysninger 29 Forkortet testprocedure 30 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015 3

4 Tilsigtet anvendelse QuantiFERON-CMV ELISA (QF-CMV) er en in vitro-analyse, der benytter en peptidcocktail, som simulerer humane cytomegalovirus (CMV)-proteiner, til stimulering af celler i hepariniseret fuldblod. Påvisning af interferon-gamma (IFN-γ) vha. Enzyme-Linked Immunosorbent Assay (ELISA) anvendes til at kvantificere in vitro-responser på de peptidantigener, der er associeret med immunkontrol af CMV-infektion. Tab af denne immunfunktion kan være associeret med udvikling af CMV-sygdom. Den tilsigtede brug af QF-CMV er at monitorere en patients niveau af anti-cmv-immunitet. QF-CMV er ikke en test til påvisning af CMV-infektion og bør ikke anvendes til at udelukke CMV-infektion. Indledning CMV er et herpesvirus, som findes hos % af de voksne i befolkningen. Det er en hyppigt forekommende komplikation til immunsuppression, navnlig efter transplantation, og kan bidrage væsentligt til morbiditet og mortalitet hos transplantatmodtagere. De aktuelt benyttede immunsuppressive behandlinger til forebyggelse af afstødning af et transplanteret organ har skadelig indvirkning på T-lymfocytter og cellemedierede immun (CMI)-responser, hvilket fører til øget modtagelighed for virusinfektioner efter transplantation. Vigtigheden af T-cellefunktion for suppression af CMV-replikation understreges også af det faktum, at CD8 + -CMV-specifikke cytotoksiske T-lymfocytter (CTL'er) kan beskytte mod virus-associeret patogenese. Optælling af CD8 + -CMVspecifikke CTL'er hos immunsupprimerede patienter og produktionen of IFN-γ kan være prædiktive for risikoen for udvikling af CMV-sygdom. IFN-γ-produktion kan være et funktionelt surrogat for identifikation af CMVspecifikke CTL'er. QF-CMV er en analyse for CMI-responser på peptidantigener, der simulerer CMV-proteiner. CMV-peptiderne er udformet til målsøgning af CD8 + -T-celler, herunder HLA-klasse I-haplotype A1, A2, A3, A11, A23, A24, A26, B7, B8, B27, B35, B40, B41, B44, B51, B52, B57, B58, B60 og Cw6 (A30, B13), der dækker > 98 % af den menneskelige befolkning. Personer, som er smittet med CMV, har sædvanligvis CD8 + -lymfocytter i deres blod, som genkender disse antigener. Denne genkendelsesproces involverer dannelse og udskillelse af cytokin IFN-γ. Påvisningen og den efterfølgende kvantificering af IFN-γ danner grundlag for denne test. 4 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

5 Analyseprincipper QF-CMV-testen udføres i 2 stadier. Først opsamles fuldblod i hvert af QF-CMV-blodprøvetagningsrørene, som omfatter et Nil Control (Negativ kontrol)-rør, et CMV Antigen (CMV-antigen)-rør og et Mitogen-rør. Mitogen-røret anvendes som positiv kontrol i QF-CMV-testen. Dette kan især være berettiget, når der er tvivl om personens immunstatus. Mitogen-røret kan også anvendes som en kontrol for korrekt blodhåndtering og -inkubering. Rørene bør inkuberes ved 37 C så hurtigt som muligt og inden for 16 timer efter prøvetagning. Efter en 16 til 24-timers inkuberingsperiode, centrifugeres rørene, plasmaet fjernes, og mængden af IFN-γ (IE/ml) målt vha. QF-CMV ELISA. Mængden af IFN-γ i plasmaprøver fra CMV Antigen- og Mitogen-rør kan ofte være over de øvre grænser for de fleste ELISA-læsere, selv for moderat immunsupprimerede personer. Til opnåelse af kvalitative resultater anvendes værdierne beregnet for ufortyndet plasma. Til opnåelse af kvantitative resultater, hvor faktiske IE/mlværdier er påkrævet, bør plasmaprøverne fortyndes 1/10 i grøn diluent og analyseres vha. ELISA sammen med ufortyndet plasma. Bemærk: For prøver, som er inden for intervallet for QF-CMV-ELISA (dvs. op til 10 IE/ml), bør resultatet opnået med den ufortyndede plasmaprøve benyttes. For sådanne IFN-γ-koncentrationer kan værdier opnået ved brug af 1/10-fortyndingen af plasmaprøverne være unøjagtig. En test anses for reaktiv for et IFN-γ-respons, når aflæsningsværdien for CMV Antigen-røret er væsentligt over Nil-IFN-γ-IE/ml-værdien. Den mitogenstimulerede plasmaprøve fungerer som en IFN-γ-positiv kontrol for hver testet prøve. Et lavt respons på mitogen indikerer et ubestemmeligt resultat, når en blodprøve også har et ikkereaktivt respons på CMV-antigenerne. Dette mønster kan forekomme ved et utilstrækkeligt antal lymfocytter, nedsat lymfocytaktivitet grundet ukorrekt prøvehåndtering, ukorrekt fyldning/blanding af Mitogen-røret eller manglende evne hos patientens lymfocytter til at danne IFN-γ, såsom hos nyligt transplanterede patienter. Nil-prøven justerer for baggrund eller ikke-specifikt IFN-γ i blodprøverne. IFN-γ-niveauet for Nil-røret trækkes fra IFN-γ-niveauet for CMV Antigen-røret og Mitogen-røret (se "Fortolkning af resultater" på side 16 i denne indlægsseddel for en beskrivelse af, hvordan QF-CMV-resultater fortolkes). Påkrævet tid til udførelse af analysen Den tid, som skal anvendes til udførelse af QF-CMV-analysen, er estimeret nedenfor; tiden til test af flere prøver, når de er samlede i batch, er også angivet: Inkubering af blodrør ved 37 C: ELISA: 16 til 24 timer Ca. 3 timer for 1 ELISA-plade Mindre end 1 times arbejde Tilføj 10 til 15 minutter for hver ekstra plade Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015 5

6 Reagenser og opbevaring Blood Collection Tubes (Single Patient Pack) (Blodprøvetagningsrør (pakke til én patient)) Katalognr Antal forberedelser 1 QuantiFERON Nil Control (Negativ kontrol) (grå hætte) QuantiFERON CMV Antigen (QuantiFERON CMV-antigen) (blå hætte) QuantiFERON Mitogen Control (Mitogen-kontrol) (lilla hætte) 1 rør 1 rør 1 rør Indlægsseddel til QF-CMV-blodprøvetagningsrør 1 QuantiFERON-CMV ELISA Components (Komponenter til QuantiFERON-CMV-ELISA) 2 Plade-kit ELISA Katalognr Mikropladestrips (12 8 brønde) dækket med murint anti-humant IFN-γ-monoklonalt antistof Human IFN-γ Standard, lyophilized (Humant IFN-γ standard, frysetørret) (indeholder rekombinant humant IFN-γ, komælkskasein, 0,01 % w/v Thimerosal) Green Diluent (Grøn diluent) (indeholder komælkskasein, normalt museserum, 0,01 % w/v Thimerosal) Conjugate 100 Concentrate, lyophilized (konjugat 100 koncentrat, frysetørret) (murint anti-humant IFN-γ HRP, indeholder 0,01 % w/v Thimerosal) Wash Buffer 20 Concentrate (Vaskebuffer 20 koncentrat) (ph 7,2, indeholder 0,05 % v/v ProClin 300) Enzyme Substrate Solution (Enzymsubstratopløsning) (indeholder H 2O 2, 3,3, 5,5 tetramethylbenzidin) Enzyme Stopping Solution (Enzymstandsningsopløsning) (indeholder 0,5M H 2SO 4)* 2 sæt mikropladestrips med 12 8 brønde 1 hætteglas (8 IE/ml, når det er rekonstitueret) 1 30 ml 1 0,3 ml ml 1 30 ml 1 15 ml Indlægsseddel til QF-CMV ELISA 1 * Indeholder svovlsyre. Se forholdsregler på side 8. 6 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

7 Nødvendige materialer, som ikke medfølger 37 C inkubator; CO 2 ikke påkrævet Kalibrerede pipetter med variabelt volumen til tilførsel af 10 µl til 1000 µl med engangsspidser Kalibreret flerkanalspipette, som kan tilføre 50 µl og 100 µl med engangsspidser Mikropladeryster Deioniseret eller destilleret vand, 2 liter Mikropladevasker (automatiseret vasker anbefales) Mikropladelæser forsynet med 450 nm filter og 620 nm til 650 nm referencefilter Opbevaring og håndtering Blodprøvetagningsrør QF-CMV-blodprøvetagningsrør opbevares ved 4 C til 25 C. QF-CMV-blodprøvetagningsrør skal have en temperatur på mellem 17 C og 25 C, når blodet fyldes i dem. QF-CMV-blodprøvetagningsrørenes holdbarhed er maksimalt 15 måneder fra fremstillingsdatoen, når de opbevares ved 4 C til 25 C. ELISA-kittets reagenser Kittet opbevares ved 2 C til 8 C. Enzyme Substrate Solution (Enzymsubstratopløsning) skal altid beskyttes mod direkte sollys. Rekonstituerede og ubrugte reagenser Se instruktioner i rekonstituering af reagenserne i "Brugsvejledning Stadie 2" (trin 3 og 5 på side 11 og 13). Den rekonstituerede humane IFN-γ-standard kan holde i op til 3 måneder, hvis den opbevares ved 2 C til 8 C. Notér den dato, hvor den humane IFN-γ-standard blev rekonstitueret. Efter rekonstituering skal ubrugt konjugat 100 koncentrat igen opbevares ved 2 C til 8 C og anvendes inden for 3 måneder. Notér den dato, hvor konjugatet blev rekonstitueret. Konjugat med brugsstyrke skal anvendes inden for 6 timer efter fremstilling. Vaskebuffer med brugsstyrke kan opbevares ved stuetemperatur (22 ± 5 C) i op til 2 uger. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015 7

8 Advarsler og forholdsregler Til in vitro-diagnostisk brug. Der skal altid anvendes en egnet laboratoriekittel, engangshandsker og beskyttelsesbriller, når der arbejdes med kemikalier. Der findes flere oplysninger i de tilhørende sikkerhedsdatablade (safety data sheets, SDS'er). Disse er tilgængelige online i et praktisk og kompakt PDF-format på adressen hvor det er muligt at finde, få vist og udskrive SDS'et for hvert QIAGEN-kit og hver kitkomponenter. FORSIGTIG: Håndter humant blod som potentielt infektiøst. Overhold relevante retningslinjer for håndtering af blod. Følgende farer og forholdsregler gælder for komponenterne i QuantiFERON-CMV ELISA. Faresætninger QuantiFERON Conjugate (QuantiFERON-konjugat) Indeholder borsyre. Fare! Kan skade fertiliteten eller det ufødte barn. Bortskaf indholdet/beholderen på et godkendt genbrugssted. Ved eksponering eller mistanke om eksponering: Søg lægehjælp. Se de særlige instruktioner før brug. Opbevares under lås. Brug beskyttelseshandsker/-tøj/-briller/ansigtsskærm. QuantiFERON Enzyme Stopping Solution (QuantiFERON-enzymstandsningsopløsning) Indeholder svovlsyre. Fare! Medfører alvorlige hudforbrændinger og øjenskader. Kan være metalætsende. Bortskaf indholdet/beholderen på et godkendt genbrugssted. VED KONTAKT MED ØJENENE: Skyl forsigtigt med vand i flere minutter. Fjern eventuelle kontaktlinser, hvis det kan gøres let. Fortsæt med at skylle. VED KONTAKT MED HUDEN (eller håret): Fjern/tag straks alt kontamineret tøj af. Skyl med vand/tag brusebad. Ring straks til et GIFTINFORMATIONSCENTER eller en læge. Opbevares under lås. Brug beskyttelseshandsker/-tøj/-briller/ansigtsskærm. QuantiFERON Enzyme Substrate Solution (QuantiFERON-enzymsubstratopløsning) Advarsel! Medfører lettere hudirritation. Ved hudirritation: Søg lægehjælp. QuantiFERON Green Diluent (QuantiFERON grøn diluent) Indeholder: trisodium 5-hydroxy-1-(4-sulfofenyl)-4-(4-sulfofenylazo)pyrazol-3-carboxylat. Advarsel! Kan medføre allergisk hudreaktion. Bortskaf indholdet/beholderen på et godkendt genbrugssted. Tag kontamineret tøj af, og vask det, før du tager det på igen. Ved hudirritation eller udslæt: Søg lægehjælp. Brug beskyttelseshandsker/-tøj/-briller/ ansigtsskærm. 8 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

9 QuantiFERON IFN-γ Standard Indeholder borsyre. Fare! Kan skade fertiliteten eller det ufødte barn. Bortskaf indholdet/beholderen på et godkendt genbrugssted. Ved eksponering eller mistanke om eksponering: Søg lægehjælp. Se de særlige instruktioner før brug. Opbevares under lås. Brug beskyttelseshandsker/-tøj/-briller/ansigtsskærm. QuantiFERON Wash Buffer 20 Concentrate (QuantiFERON vaskebuffer 20 koncentrat), nyt Indeholder ProClin 300. Advarsel! Kan medføre allergisk hudreaktion. Brug beskyttelseshandsker/-tøj/-briller/ansigtsskærm. Sikkerhedsinformationer Yderligere information Afvigelser fra indlægssedlen til QF-CMV kan forårsage fejlagtige resultater. Læs instruktionerne grundigt inden brug. Kittet må ikke anvendes, hvis en eller flere af reagensflaskerne viser tegn på beskadigelse eller lækage inden brug. Mikropladestrips, Humant IFN-γ-standard, Grøn diluent eller Konjugat 100 koncentrat fra andre QF-CMV-kitbatches må ikke iblandes eller anvendes. Andre reagenser (Wash Buffer 20 Concentrate, Enzyme Substrate Solution og Enzyme Stopping Solution) kan udskiftes mellem kits, hvis reagenserne er inden for deres udløbsperioder, og lotdetaljerne er registreret. Bortskaf ubrugte reagenser og biologiske prøver i henhold til lokale, regionale og nationale bestemmelser. Hverken QF-CMV-blodprøvetagningsrør eller QF-CMV-ELISA-kits må anvendes efter udløbsdatoen. Sørg for, at laboratorieudstyr, som f.eks. pladevaskere og -læsere, er kalibreret/valideret til brug. Prøveindsamling og -håndtering Der anvendes følgende blodprøvetagningsrør til QF-CMV: 1. Nil Control (Negativ kontrol) (grå hætte) 2. CMV Antigen (CMV-antigen) (blå hætte) 3. Mitogen Control (Mitogen-kontrol) (lilla hætte) Der er fasttørret antigener på blodprøvetagningsrørenes inderside, så det er væsentligt, at rørenes indhold blandes grundigt med blodet. Rørene skal overføres til en 37 C inkubator så hurtigt som muligt og inden for 16 timer efter prøvetagning. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015 9

10 Følgende procedurer bør følges for at opnå optimale resultater: 1. For hver person opsamles 1 ml blod ved venepunktur direkte i hvert af QF-CMVblodprøvetagningsrørene. Denne procedure skal udføres af en uddannet bioanalytiker. QF-CMV-blodprøvetagningsrør kan anvendes i højder op til 810 meter. Hvis der anvendes QF-CMV-blodprøvetagningsrør i højder over 810 meter, eller hvis der aftappes for lidt blod, kan der udtages blod ved hjælp af en sprøjte, og straks overføres 1 ml til hvert af de 3 rør. Af sikkerhedsmæssige årsager gøres dette bedst ved at fjerne sprøjtekanylen under overholdelse af passende sikkerhedsprocedurer, fjerne hætterne fra de tre QF-CMV-rør og tilsætte 1 ml blod til hvert af dem (op til det sorte mærke på siden med røretiketten). Sæt hætterne godt fast på rørene igen, og bland som beskrevet nedenfor. Eftersom 1 ml rør aftapper blod relativt langsomt, skal røret beholdes på kanylen i 2-3 sekunder, når røret ser ud til at være helt fyldt for at sikre, at der udtrækkes det korrekte volumen. Det sorte mærke på siden af rørene angiver 1 ml fyldningsvolumenet. QF-CMV-blodprøvetagningsrør er godkendt til volumener i intervallet fra 0,8 til 1,2 ml. Hvis blodniveauet i et eller flere af rørene ikke er tæt på indikatorstregen, anbefales det at fremskaffe en anden blodprøve. Hvis der anvendes en sommerfuglekanyle til udtagning af blod, bør der anvendes et "gennemskylningsrør" for at sikre, at slangen fyldes med blod inden brug af QF-CMV-blodprøvetagningsrørene. Alternativt kan blod opsamles i et enkelt generisk blodprøvetagningsrør, der indeholder lithiumheparin som antikoagulans og derefter overføres til QF-CMV-rør. Brug kun lithium-heparin som antikoagulans til blod, da andre antikoagulanser kan påvirke analysen. Fyld et blodprøvetagningsrør (mindst 5 ml volumen), og bland forsigtigt ved at vende røret flere gange for at opløse heparinen. Blod skal opbevares ved stuetemperatur (22 ± 5 C), før det overføres til QF-CMV-rør til inkubering, hvilket skal påbegyndes inden for 16 timer fra blodprøvetagningen. 2. Straks efter påfyldning af QF-CMV-rørene skal de rystes ti (10) gange lige akkurat kraftigt nok til at sikre, at hele indersiden af hvert rør er dækket af blod, så antigenerne på indersiden af røret opløses. Rørene skal holdes på mellem 17 C og 25 C, når blodet fyldes i dem. For kraftig rystning af rørene kan skabe gel-forstyrrelser og forårsage afvigende resultater. Hvis blodet er blevet opsamlet i et lithium-heparin-rør, skal prøverne blandes jævnt, før de dispenseres i QF-CMV-rør. Sørg for, at blodet er grundigt blandet ved at vende det forsigtigt umiddelbart før dispensering. Dispensér i mængder på 1 ml aliquot (én for hvert QF-CMV-rør) i et passende Nil-, CMV Antigen- og Mitogen-rør. Dette udføres bedst aseptisk ved at sikre passende sikkerhedsprocedurer, fjerne hætterne fra de tre QF-CMV-rør og føje 1 ml blod til hvert (til det sorte mærke på siden af røretiketterne). Sæt hætterne godt fast på rørene igen, og bland som beskrevet ovenfor. 3. Mærk rørene korrekt. Sørg for, at hvert rør (Nil, CMV Antigen, Mitogen) kan identificeres via mærkningen eller på anden måde. 4. Efter fyldning, rystning og mærkning skal rørene overføres til en 37 ± 1 C inkubator så hurtigt som muligt og inden for 16 timer efter prøvetagning. Før inkubering skal rørene opbevares ved stuetemperatur (22 ± 5 C). Blodprøverne må ikke nedkøles eller -fryses. 10 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

11 Brugsvejledning Stadie 1 Inkubering af blod og opsamling af plasma 1. Hvis blodet ikke inkuberes straks efter prøvetagningen, skal man gentage blandingen af rørene ved at vende dem på hovedet og op igen 10 gange før inkubering. 2. Inkuber rørene STÅENDE ved 37 C i 16 til 24 timer. Inkubatoren kræver ikke CO 2 eller fugt. 3. Efter inkubering kan blodprøvetagningsrørene holdes mellem 4 C og 27 C i op til 3 dage inden næste trin. 4. Efter inkubering af rørene ved 37 C opsamles plasmaet nemmere ved at centrifugere rørene i 15 minutter ved 2000 til 3000 RCF (g). Gelproppen skiller cellerne fra plasmaet. Hvis dette ikke sker, bør rørene recentrifugeres ved højere hastighed. Det er muligt at opsamle plasmaet uden centrifugering, men der kræves større forsigtighed for at fjerne plasmaet uden at hvirvle cellerne op. 5. Efter centrifugering skal det undgås at pipettere op og ned eller på nogen måde blande plasmaet inden opsamling. Pas til enhver tid på ikke at hvirvle materialet på gelens overflade op. Plasmaprøver bør kun opsamles ved brug af en pipette. Plasmaprøverne kan overføres direkte fra centrifugerede blodprøvetagningsrør til QF-CMV-ELISApladen, også når der anvendes automatiserede ELISA-arbejdsstationer. Plasmaprøverne kan opbevares i op til 28 dage ved 2 C til 8 C. Efter opsamling kan plasmaet også opbevares i længere perioder i rør eller plasmaopbevaringsbeholdere ved mindre end -20 C (fortrinsvis mindre end -70 C). For at opnå tilstrækkelige prøver skal der opsamles mindst 150 µl plasma. Stadie 2 QuantiFERON-CMV-ELISA for humant IFN-γ 1. Alle plasmaprøver og reagenser, bortset fra konjugat 100 koncentrat, skal bringes til stuetemperatur (22 ± 5 C) inden brug. Afsæt mindst 60 minutter til temperaturudligning. 2. Fjern de strips, der ikke er påkrævet, fra rammen, genforsegl dem i folieposen, og opbevar dem i køleskabet, indtil de skal bruges. Anvend mindst én strip til QF-CMV-ELISA-standarderne og et tilstrækkeligt antal strips i forhold til det antal patienter, der skal testes. Gem rammen og låget efter brug med henblik på brug sammen med de resterende strips. 3. Rekonstituer den frysetørrede humane IFN-γ-standard med det volumen deioniseret eller destilleret vand, som er angivet på etiketten på Standard-hætteglasset. Bland forsigtigt for at minimere skumdannelse og sikre fuldstændig genopløsning. Rekonstituering af standarden til det angivne volumen vil give en opløsning med en koncentration på 8,0 IE/ml. Bemærk: Rekonstitueringsvolumen i den humane IFN-γ-standard (kitstandard) afviger i de forskellige batches. Brug den rekonstituerede kitstandard til at producere en 1-i-4-fortyndingsserie af IFN-γ i kittets grøn diluent (GD) (se Figur 1). S1 (Standard 1) indeholder 4,0 IE/ml, S2 (Standard 2) indeholder 1,0 IE/ml, S3 (Standard 3) indeholder 0,25 IE/ml, og S4 (Standard 4) indeholder 0 IE/ml (GD alene). Standarderne skal som minimum analyseres med dobbeltbestemmelse. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/

12 Anbefalet procedure for standarder med dobbeltbestemmelse a. Mærk 4 rør "S1", "S2", "S3", "S4". b. Tilsæt 150 µl GD i S1, S2, S3, S4. c. Tilsæt 150 µl af kitstandarden i S1, og bland grundigt. d. Overfør 50 µl fra S1 til S2 og bland grundigt. e. Overfør 50 µl fra S2 til S3 og bland grundigt. f. GD alene fungerer som nulstandard (S4). 150 µl 50 µl 50 µl Rekonstitueret Kit Standard Standard 1 4,0 IE/ml Standard 2 1,0 IE/ml Standard 3 0,25 IE/ml Standard 4 0 IE/ml (grøn diluent) Figur 1. Forberedelse af standardkurve via seriel fortynding. Fremstil friske fortyndinger af kitstandarden til hver ELISAsession. 4. Rekonstituer frysetørret konjugat 100 koncentrat med 0,3 ml deioniseret eller destilleret vand. Bland forsigtigt for at minimere skumdannelse og sikre fuldstændig opløsning af konjugatet. Konjugat med brugsstyrke fremstilles ved at fortynde den påkrævede mængde rekonstitueret konjugat 100 koncentrat i grøn diluent (se tabel 1 Forberedelse af konjugat med brugsstyrke). Bland grundigt, men forsigtigt for at undgå skumdannelse. Sæt ubrugt konjugat 100 koncentrat på køl igen ved 2 C til 8 C straks efter brug. Brug kun grøn diluent. 12 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

13 Tabel 1. Forberedelse af konjugat med brugsstyrke Antal strips Volumen af konjugat 100 koncentrat Volumen af grøn diluent 2 10 µl 1,0 ml 3 15 µl 1,5 ml 4 20 µl 2,0 ml 5 25 µl 2,5 ml 6 30 µl 3,0 ml 7 35 µl 3,5 ml 8 40 µl 4,0 ml 9 45 µl 4,5 ml µl 5,0 ml µl 5,5 ml µl 6,0 ml 5. Plasmaprøver, der er opsamlet fra blodprøvetagningsrør og efterfølgende nedfrosset eller opbevaret i mere end 24 timer før en analyse, skal blandes grundigt, før de tilsættes i ELISA-brønden. Hvis plasmaprøver skal tilføjes direkte fra de centrifugerede QF-CMV-rør, skal eventuel blanding af plasmaet undgås. 6. Hvis der kræves kvantitative resultater, skal man fortynde CMV- og Mitogen-plasma 1/10 i grøn diluent (10 µl plasma blandet med 90 µl GD). Nil (Negativ kontrol)-plasma bør ikke fortyndes. Det anbefales at teste følgende prøver parallelt: Nil, CMV Antigen, Mitogen, CMV Antigen (1/10), Mitogen (1/10) Følgende patientprøvemuligheder understøttes imidlertid også af QuantiFERON-CMV-analysesoftwaren: Nil, CMV Antigen, Mitogen Nil, CMV Antigen (1/10), Mitogen (1/10) Nil, CMV Antigen, Mitogen, CMV Antigen (1/10) Nil, CMV Antigen (1/10), Mitogen 7. Tilsæt 50 µl friskfremstillet konjugat med brugsstyrke til de påkrævede ELISA-brønde ved brug af en flerkanalspipette. 8. Tilsæt 50 µl testplasmaprøver til de relevante brønde ved brug af en flerkanalspipette. Tilsæt til sidst 50 µl af hver af standard 1 til Bland konjugatet og plasmaprøver/standarder grundigt ved brug af en mikropladeryster i 1 minut. 10. Dæk hver plade med et låg, og inkuber dem ved stuetemperatur (22 ± 5 C) i 120 ± 5 minutter. Pladerne bør ikke udsættes for direkte sollys under inkuberingen. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/

14 11. Mens inkuberingen foregår, fortyndes én del vaskebuffer 20 koncentrat med 19 dele deioniseret eller destilleret vand, hvorpå det blandes grundigt. Der er leveret tilstrækkeligt vaskebuffer 20 koncentrat til fremstilling af 2 liter vaskebuffer med brugsstyrke. Vask brøndene med 400 µl vaskebuffer med brugsstyrke i mindst 6 cyklusser. Det anbefales at benytte en automatiseret pladevasker. Grundig vask er meget vigtig for analysens ydeevne. Sørg for at fylde alle brønde helt op til kanten med vaskebuffer i hver eneste vaskecyklus. En iblødsætningsperiode på mindst 5 sekunder mellem hver cyklus anbefales. Der bør tilsættes laboratoriedesinfektionsmiddel af standardtype til spildevandsreservoiret, og fastlagte procedurer for dekontaminering af potentielt infektiøst materiale bør følges. 12. Bank pladerne let med oversiden nedad mod absorberende klæde for at fjerne resterende vaskebuffer. Tilsæt 100 µl enzymsubstratopløsning til hver brønd, og bland grundigt ved brug af en mikropladeryster. 13. Dæk hver plade med et låg, og inkuber dem ved stuetemperatur (22 ± 5 C) i 30 minutter. Pladerne bør ikke udsættes for direkte sollys under inkuberingen. 14. Når der er inkuberet i 30 minutter, tilsættes 50 µl enzymstandsningsopløsning til hver brønd, hvorpå der blandes. Enzymstandsningsopløsning bør tilsættes til brøndene i samme rækkefølge og med ca. samme hastighed som substratet i trin Mål Optical Density (OD, Optisk densitet) for hver brønd inden for 5 minutter efter standsning af reaktionen ved brug af en mikropladelæser forsynet med et 450 nm filter og et 620 nm til 650 nm referencefilter. OD-værdier anvendes til beregning af resultater. 14 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

15 Beregninger og testfortolkning QuantiFERON-CMV-analysesoftware til analyse af rådata og beregning af resultater kan fås fra QIAGEN på Softwaren udfører en kvalitetskontrolvurdering af analysen, genererer en standardkurve og leverer et testresultat for hver patient, som beskrevet i afsnittet Fortolkning af resultater. Analysesoftwaren rapporterer den laveste fortynding, der genererer et resultat inden for området for QF-CMV ELISA, hvor der tages højde for fortyndingsfaktoren. Som alternativ til brug af QF-CMV-analysesoftwaren kan resultaterne bestemmes med følgende metode. Generering af standardkurve (hvis QF-CMV-analysesoftwaren ikke anvendes) Bestem de gennemsnitlige OD-værdier for Kit Standard (Kitstandard)-replikaterne på hver plade. Konstruer en log (e)-log (e)-standardkurve ved at afbilde log (e) af den gennemsnitlige OD (y-akse) mod log (e) af IFN-γ-koncentrationen i standarderne i IE/ml (x-akse), idet nulstandarden udelades fra disse beregninger. Beregn den bedst tilpassede linje for standardkurven ved regressionsanalyse. Benyt standardkurven til at bestemme IFN-γ-koncentrationen (IE/ml) for hver af testplasmaprøverne ved brug af OD-værdien for hver prøve. Disse beregninger kan udføres ved brug af de softwarepakker, der følger med mikropladelæsere og standardregnearks- eller statistiksoftware (såsom Microsoft Excel ). Det anbefales, at disse pakker anvendes til at beregne regressionsanalysen, variationskoefficienten (%CV) for standarderne og korrelationskoefficienten (r) for standardkurven. Det rapporterede resultat skal tages fra den laveste fortynding, som genererer et resultat inden for området for QF-CMV ELISA. Husk, at tage højde for fortyndingsfaktoren, hvor det er relevant. Kvalitetskontrol af testen Testresultaternes nøjagtighed afhænger af generering af en nøjagtig standardkurve. Derfor skal resultater for standarderne undersøges, inden testprøveresultaterne kan fortolkes. Følgende er nødvendigt, for at ELISA er gyldig: Den gennemsnitlige OD-værdi for Standard 1 skal være 0,600. %CV for replikat-od-værdierne for Standard 1 og Standard 2 skal være < 15 %. Replikat-OD-værdierne for Standard 3 og 4 må ikke variere med mere end 0,040 OD-enheder i forhold til deres gennemsnit. Den ud fra de gennemsnitlige absorbansværdier for standarderne beregnede korrelationskoefficient (r) skal være 0,98. QF-CMV-analysesoftwaren beregner og rapporterer disse kvalitetskontrolparametre. Hvis ovennævnte kriterier ikke er opfyldt, er kørslen ugyldig og skal gentages. Den gennemsnitlige OD-værdi for nulstandarden (grøn diluent) bør være 0,150. Hvis den gennemsnitlige OD-værdi er > 0,150, bør pladevaskeproceduren undersøges nærmere. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/

16 Fortolkning af resultater QuantiFERON-CMV-resultater fortolkes ved brug af følgende kriterier: CMV minus Nil (IE/ml)* Mitogen minus Nil (IE/ml) QF-CMV-resultat Rapport/fortolkning < 0,2 0,5 Ikke-reaktiv Immunrespons for CMV-antigener IKKE påvist 0,2 Alle værdier Reaktiv Immunrespons for CMV-antigener påvist < 0,2 < 0,5 Ubestemmeligt Immunrespons for CMV-antigener og Mitogen kan ikke påvises * Det er almindeligt forekommende, at IFN-γ-responser på den CMV Antigen- og Mitogen-positive kontrol er uden for mikropladelæserens interval. Dette har ingen betydning for kvalitative resultater. Se afsnittet Fejlfinding vedrørende mulige årsager. Begrænsninger Resultaterne af QuantiFERON-CMV-test skal anvendes i sammenhæng med hver enkelt persons epidemiologiske anamnese, aktuelle helbredstilstand, og andre diagnostiske vurderinger. Upålidelige eller ubestemmelige resultater kan forekomme som følge af: Afvigelser fra den procedure, der er beskrevet i indlægssedlen til QuantiFERONTB-CMV ELISA For høje niveauer af IFN-γ i kontrolrøret. Mere end 16 timer mellem blodprøvetagningen og inkuberingen ved 37 C. 16 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

17 Forventede værdier Forventede IFN-γ-værdier ved hjælp af QuantiFERON-CMV blev opnået ved test af 591 prøver fra raske personer 343 prøver blev testet seropositive og 248 prøver blev testet seronegative for CMV IgG. CMV-serologistatussen var ukendt på tidspunktet for QF-CMV-testen. I de 248 prøver fra CMV-seronegative personer blev 100 % (248/248) af prøverne testet ikke-reaktive via QF-CMV ELISA, der producerer IFN-γresponser på < 0,2 IE/ml til CMV Antigen-røret (Nil fratrukket). Fordelingen af IFN-γ-responser på CMV Antigen-røret (Nil fratrukket) for de 343 CMV-seropositive personer er vist (figur 2). Antal prøver IFN-γ (IE/ml) Figur 2. Fordelingen af QF-CMV IFN-γ-responser (Nil fratrukket) hos seropositive raske personer (n = 343). Fordelingen af IFN-γ-responser på Mitogen (Nil fratrukket) blev bestemt ved hjælp af 733 prøver fra raske voksne personer ved hjælp af QF-CMV ELISA, uanset CMV IgG-serologien (figur 3). Et Mitogen-resultat (Nil fratrukket) på under 0,5 IE/ml angiver enten en testfejl, eller at personen er i immunkompromitteret tilstand. I en rask population faldt kun 2/733 resultater i denne kategori. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/

18 Antal prøver IFN-γ (IE/ml) Figur 3. Fordelingen af Mitogen-IFN-γ-responser (Nil fratrukket) hos raske personer (n = 733). Fordelingen af IFN-γ-responser på Nil-rør blev bestemt ved hjælp af 1020 plasmaprøver fra raske personer ved hjælp af QF-CMV ELISA, uanset CMV IgG-serologien (figur 4). Population (%) IFN-γ (IE/ml) Figur 4. Fordeling Nil IFN-γ-responser hos raske personer (n = 1020) vist som en procentdel af populationen. 18 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

19 Ydelsesegenskaber Klinisk ydeevne En testtærskel for påvisning af tidligere CMV-eksponering ved brug af QF-CMV blev fastlagt efter analyse af resultater for en gruppe raske personer (n = 223), hvor QF-CMV-resultater blev sammenlignet med CMV IgGserologiresultater. Det blev ved ROC-analyse fastslået, at en testtærskel på 0,04 IE/ml (efter nil-fratrækning) gav optimale positive og negative prædiktive værdier for QF-CMV (areal under kurven = 0,9679 [95 % CI = 0,9442 til 0,9915, p < 0,0001]) og dermed repræsenterede tærsklen, hvor denne analyse kunne udnyttes mest effektivt til sin tilsigtede brug i en rask population. Ydeevnen i QF-CMV-analysen blev sammenlignet med SeraQuest CMV IgG-serologitesten (Quest International). QF-CMV-analysen udviste 95 % (294/310 personer) overensstemmelse med CMV IgG-serologitesten hos raske personer, idet ingen af de 149 seronegative donorer udviste reaktivitet ved QF-CMV, og 145 ud af 161 seropositive donorer udviste et reaktivt QF-CMV-respons. Den samlede positive overensstemmelse var 90 %, og den negative overensstemmelsesværdi var 100 %. Overensstemmelsesniveauet blandt raske personer mellem QF-CMV-responser og CMV IgG-serologistatussen er vist i tabel 2. Tabel 2. Overensstemmelse mellem QuantiFERON-CMV og CMV-IgG-serologitest hos raske personer. CMV-serologi Positiv Negativ I alt Reaktiv QuantiFERON-CMV (46,8 %) Ikke-reaktiv (53,2 %) I alt 161 (51,9 %) 149 (48,1 %) 310 (100 %) Analysetærskel Den anbefalede kliniske testtærskel for denne analyse er 0,2 IE/ml i CMV Antigen-røret (Nil fratrukket), omend der kan godkendes forskellige tærskler til forskellige kliniske miljøer. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/

20 Kliniske undersøgelser Da der ikke findes en endelig standard for bekræftelse eller udelukkelse af diagnosen cytomegalovirusinfektion, kan et estimat af følsomheden og specificiteten for QF-CMV ikke vurderes i praksis. Tilnærmet specificitet og følsomhed i QF-CMV blev bestemt ved at vurdere niveauet af overensstemmelsen mellem QF-CMV-responser og CMV IgG-serologistatussen hos raske personer. Tilnærmet specificitet i QF-CMV blev bestemt ved at vurdere falsk-positive rater (reaktivt QF-CMV-respons) hos raske donorer uden tegn på tidligere CMV-eksponering (CMV IgG-seronegative personer). Tilnærmet følsomhed blev bestemt ved at vurdere QF-CMV-responset hos raske donorer med tegn på tidligere CMVeksponering (CMV IgG-seropositive personer). QF-CMV benytter et stort antal CMV-specifikke epitoper fra forskellige CMV-proteiner og er dermed en bred dækning af populationen med forskellige HLA-klasse I- haplotyper (ca. 98 % af populationen). Eftersom HLA-haplotyperne hos personer testet i forhold til CMVserologi var ukendt, var det forventet, at der for en lille procentdel af de serologipositive personer ikke ville være reaktion på QF-CMV-rørene. Specificitet I en undersøgelse af 591 prøver fra raske personer blev ingen falsk-positive QF-CMV-resultater påvist hos personer, der blev testet seronegative for CMV IgG med 248/248 prøver testet ikke-reaktive for QF-CMV ELISA og negative for CMV IgG-serologitest. De resultater, der blev opnået ved hjælp af QF-CMV og CMV IgG-serologitesten, viste derfor 100 % overensstemmelse. I alle andre specificitetsevalueringer udført hos modtagere af hele organtransplantater (1, 3, 4, 8, 12, 14-16), modtagere af hæmatopietiske stamcelletransplantater (7, 13) og HIV-smittede patienter (2) har overensstemmelsen mellem QF-CMV og CMV IgG-serologien også vist sig at være 100 %. Følsomhed I en undersøgelse af 343 prøver fra raske personer, der blev testet seropositive for CMV IgG, var overensstemmelsesniveauet mellem QF-CMV-responser og CMV IgG-serologiresultater 80,5 % med 275/343 prøver testet reaktive for QF-CMV og positive for CMV IgG-serologitesten. Den observerede uoverensstemmelse kan skyldes falsk-positiv CMV-serologi eller fraværet af responsive HLA-typer hos de testede personer. Overensstemmelsesniveauerne i følsomhedsvurderinger udført hos modtagere af hele organtransplantater (1, 3, 4, 8, 12, 14-16), modtagere af hæmatopoietiske stamcelletransplantater (7, 13) og HIV-smittede patienter (2) har vist sig at være lavere og kan skyldes falsk-positiv CMV-serologi, fraværet af responsive HLA-typer hos de testede personer eller fraværet af reaktive T-celler hos disse patienter som følge af deres immunosuppression. Undersøgelser, som fremhæver den kliniske anvendelighed For både CMV IgG-serologi og QF-CMV er den tilsigtede brug beskrevet som muliggørelse af påvisning af immunitet over for CMV. I et transplantationsmiljø anvendes CMV-serologi hyppigt før transplantation for at fastlægge risikoen for, at der opstår CMV-komplikationer hos modtageren efter transplantation, men testmetoden har begrænset værdi efter transplantation. Alternativt kan QF-CMV anvendes hos transplantatmodtagere til vurdering af niveauet af CMV-immunitet hos de patienter, som har risiko for at udvikle symptomatisk CMV-infektion og/eller -sygdom som følge af immunsuppression (6, 9-11). En række offentliggjorte kliniske undersøgelser for flere forskellige transplantatkohorter har påvist anvendeligheden af QuantiFERON-CMV (1-5, 7, 8, 11-16). 20 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

21 I en stor undersøgelse med 108 modtagere af hele organtransplanter (4) havde patienter med et reaktivt QF-CMV-resultat ved afslutningen af anti-cmv profylaksen en væsentlig lavere rate af efterfølgende CMVsygdom (3,3 % eller 1/30 ved en tærskel på 0,2 IE/ml) sammenlignet med patienter, der havde et ikkereaktivt QF-CMV-resultat (21,8 % eller 17/78, p = 0,044) (figur 5). Incidens af efterfølgende CMV-sygdom (%) Incidens af efterfølgende CMV-sygdom (%) Ikke-reaktiv (n = 70) Reaktiv (n = 38) p = 0,038 CMI ved afslutning af profylakse (IFN-γ IE/ml) 0,1 IE/ml cutoff-værdi Ikke-reaktiv (n = 78) Reaktiv (n = 30) p = 0,044 CMI ved afslutning af profylakse (IFN-γ IE/ml) 0,2 IE/ml cutoff-værdi A B Figur 5. Rater af sent debuterende CMV-sygdom hos patienter med et reaktivt QuantiFERON-CMV-resultat i forhold til et ikke-reaktivt QuantiFERON-CMV-resultat ved afslutningen af profylakse. Data gengivet fra Kumar et al (4). CMV-seronegative transplantatmodtagere, som modtog et organ fra en CMV-positiv donor (D+R-) med et reaktivt QF-CMV-resultat efter afslutningen af profylakse, forblev desuden fri for CMV-sygdom oftere og i længere tid, hvilket indikerer, at QF-CMV kan anvendes til at identificere dem, der har risiko for at udvikle sent debuterende CMV-sygdom. Denne undersøgelse fremhævede også, at i kohorten med transplantationspatienter med den højeste risiko for udvikling af CMV-sygdom (D+/R-) var et reaktivt resultat til enhver tid efter profylakse associeret med en højere chance for at forblive fri for CMV-sygdom. I en undersøgelse med 37 modtagere af hele organtransplantater (12) bidrog vurderingen af CMV-specifikke CD8 + -T-celleresponser med QF-CMV til forudsigelse af spontan viral clearance i forhold til CMV-sygdomsprogression efter forhøjelser i CMV-viræmi. I denne undersøgelse opstod der spontan clearance af CMV-virus hos 24/26 patienter (92,3 %) med et QF-CMV-reaktivt resultat (ved hjælp af en IFN-γ-testtærskel på 0,2 IE/ml), mens kun 5/11 (45,5 %) patienter med et ikke-reaktivt QF-CMV-resultat havde det samme resultat. I en undersøgelse med 67 lungetransplantatmodtagere til vurdering af episoder af CMV-viræmi efter transplantation (14) blev det observeret, at 18/25 (72 %) episoder af CMV-viræmi forekom efter et ikkereaktivt QF-CMV-resultat, mens der forekom 4/16 (25 %) episoder efter et reaktivt QF-CMV-resultat (Fishers nøjagtige test, p = 0,0046, se figur 6). Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/

22 p = 0,0046 % HCMV-DNAæmi-episoder med en viral belastning på > 1000 kopier/ml Ikke-reaktiv (n = 25) Reaktiv (n = 16) Forudgående HCMV-specifikke CD8 + -T-celleresponser Figur 6. Statistisk analyse af CMV-specifikke CD8 + -T-celleresponser som påvist med QuantiFERON-CMV og udviklingen af CMV-viræmi (Fishers eksakte test, p = 0,0046). Data gengivet fra Weseslindtner et al (14). I en stor prospektiv multicenterundersøgelse med 127 CMV-seronegative modtagere af hele organtransplanter from CMV-seropositive donorer (15), som alle modtog antiviral profylakse, hvilket vist, at patienter med et reaktivt QF-CMV-resultat (ved brug af en 0,1 IE/ml testtærskel) til enhver tid efter afslutningen af anti-cmvprofylakse havde en væsentligt lavere rate af sent debuterende sygdom 12 måneder efter transplantation (6,4 %), i forhold til dem med et ikke-reaktivt QF-CMV-resultat (22,2 %) og et ubestemmeligt resultat (58,3 %, p < 0,001). Ved klassificering af ubestemmelige resultater som også værende "ikke-reaktive" var incidensen af efterfølgende CMV-sygdom 6,4 % i forhold til 26,8 %, p = 0,024. De positive og negative prædiktive værdier fra QF-CMV for beskyttelse mod CMV-sygdom blev rapporteret som værende henholdsvis 0,90 (95 % CI 0,74-0,98) og 0,27 (95 % CI 0,18-0,37). I denne undersøgelse blev det påvist, at QF-CMV kan være brugbar til at forudsige, om patienter har lav, mellemhøj eller høj risiko for at udvikle CMV-sygdom efter profylakse. I en prospektiv undersøgelse med 55 modtagere af hele organtransplantater (16), hvor forholdet mellem QF-CMV-resultater fundet før transplantation og CMV-replikationsepisoder opstået efter transplantation blev analyseret, viste det sig, at der blev observeret en højere incidens af CMV-replikation efter transplantation hos CMV-seropositive modtagere med et ikke-reaktivt (ved brug af en 0,2 IE/ml testtærskel) QF-CMV-resultat før transplantation (7/14 eller 50 %), sammenlignet med de CMV-seropositive modtagere med et reaktivt QF-CMV-resultat før transplantation (4/30 eller 13,3 %, p = 0,021). I denne undersøgelse blev det påvist, at modtagere med en ikke-reaktiv QF-CMV-respons før transplantation, og som modtog et organ fra en CMV-seropositiv donor, havde en ti gange større risiko for CMV-replikation sammenlignet med de modtagere, som havde en reaktiv QF-CMV-respons før transplantation (justeret OR 10,49, 95 % CI 1,88-58,46). Derfor kan en QF-CMV-analyse før transplantationen være nyttig til at forudsige risikoen for CMV-replikation efter transplantation og dermed muliggøre individuel CMV-infektionsbehandling efter transplantation af et helt organ. En række andre undersøgelser vedrørende påvisning af CMV-specifikke CD8 + -T-celleresponser med QF-CMV i en kohorte af transplantatmodtagere, er gennemført (1, 3, 5, 7, 8, 11, 13) eller under udførelse verden over. 22 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

23 Internationale konsensusretningslinjer for håndtering af cytomegalovirus ved transplantation af hele organer Vigtigheden af CMV-specifik immunmonitorering er anerkendt og offentliggjort i "Updated International Consensus Guidelines on the Management of Cytomegalovirus in Solid Organ Transplantation" (6). Disse internationale retningslinjer, som er udarbejdet af et panel af eksperter i CMV og transplantation af hele organer nedsat af The Infectious Diseases Section under The Transplantation Society, udgør konsensusretningslinjer, som er baseret på evidens og ekspertudtalelser, om CMV-håndtering inklusive: diagnostik, immunologi, forebyggelse og behandling. I disse retningslinjer er det konkluderet, at immunmonitorering af CMV-specifikke T-celleresponser kan føre til forudsigelse af, hvilke individer, der har risiko for CMV-sygdom efter transplantation, og kan være brugbar til styring af profylakse og forebyggende behandlinger (6). Retningslinjerne giver endvidere også anbefalinger vedrørende karakteristika for den ideelle immunmonitoreringsanalyse, som omfatter følgende: Evne til at vurdere mængden og funktionen af en transplantatmodtagers CD4 + - og CD8 + -T-celler Evne til at måle IFN-γ Simpel at udføre, omkostningseffektiv og reproducerbar Har en kort analysetid Giver mulighed for nem forsendelse af prøver til specialiserede henvisningslaboratorier QF-CMV opfylder praktisk talt alle kriterierne ifølge disse retningslinjer og udgør den eneste standardiserede immunmonitoreringsanalyse, som kan påvise IFN-γ, og som er specifik for CMV. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/

24 Analysens ydelseskarakteristika QF-CMV ELISA bruger en rekombinant human IFN-γ-standard, der er blevet analyseret med en IFN-γ-forberedelse som reference (NIH-ref: Gxg ). Resultaterne for testprøverne afrapporteres i internationale enheder (IE) ift. en standardkurve, der er klargjort ved test af fortyndning af den sekundære standard, som blev leveres med kittet. Heterofile (f.eks. humane anti-mus) antistoffer i serum eller plasma for bestemte personer har vist sig at kunne forårsager interferens med immunanalyser. Påvirkningen fra heterofile antistoffer i QF-CMV ELISA minimeres ved at tilføjelse af normal museserum til grøn diluent og brugen af F(ab )2-monoklonale antistoffragmenter som IFN-γ-antistofopfangning dækket af mikropladebrøndene. Påvisningsgrænsen for QF-CMV ELISA er 0,05 IE/ml, og der er ikke noget tegn på en prozoneffekt ("højdosiskrogeffekt") for koncentrationer af IFN-γ på op til IE/ml. QF-CMV ELISA-antistofferne har vist sig ikke at have krydsreaktivitet med de testede cytokiner, herunder IL2, IL3, IL4, IL5, IL6, IL10 og IL12. QF-CMV ELISA har vist sig at være lineær ved at placere 5 replikater af 11 plasmapools med kendte IFN-γkoncentrationer tilfældigt på ELISA-pladen. Den lineære regressionslinje har en hældning på 1,002 ± 0,011 og en korrelationskoefficient på 0,99 (figur 7). Bestemt niveau af IFN-γ Forventet niveau af IFN-γ (IE/ml) Figur 7. Linearitetsprofil for QF-CMV ELISA bestemt ud fra test af 5 replikater af 11 plasmaprøver med kendte IFN-γ-koncentrationer. Reproducerbarheden af QF-CMV ELISA blev vurderet ved at teste 20 plasmaprøver med varierende IFN-γkoncentrationer med tredobbelt bestemmelse, på 3 laboratorier, på 3 ikke-fortløbende dage og udført af 3 operatører. Hver prøve blev således testet 27 gange og i 9 uafhængige analysekørsler. Den ene prøve var en negativ kontrol og havde en beregnet IFN-γ-koncentration på 0,08 (95 % CI 0,07-0,09) IE/ml. For de resterende 19 plasmaprøver var koncentrationsintervallet 0,33 (0,31-0,34) til 7,7 IE/ml (7,48-7,92). Unøjagtigheden inden for en kørsel eller analyse blev estimeret ved at beregne gennemsnittet af %CVværdierne for hver testplasma med IFN-γ fra hver pladekørsel (n = 9), som lå fra 4,1 til 9,1 % CV. Inden for en kørsel var %CV-gennemsnittet (±95 % CI) 6,6 ± 0,6 %. For plasma uden IFN-γ var gennemsnittet 14,1 % CV. Upræcisheden samlet set eller mellem analyser blev bestemt ved at sammenligne de 27 beregnede koncentrationer af IFN-γ for hver plasmaprøve, og den lå fra 6,6 til 12,3 % CV. Samlet set var %CV-gennemsnittet (±95 % CI) 8,7 ± 0,7 %. For plasma uden IFN-γ var resultatet 26,1 % CV. Dette variationsniveau er forventeligt, fordi den beregnede koncentration af IFN-γ er lav, og variationen omkring et lavt koncentrationsestimat vil være større end den for højere koncentrationer. 24 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

25 Teknisk information Ubestemmelige resultater Ubestemmelige resultater kan være relateret til immunstatus hos den person, som testes, men kan også skyldes en række tekniske faktorer: Mere end 16 timer fra blodprøvetagning til inkubering ved 37 C. Opbevaring af blod uden for det anbefalede temperaturområde (22 ± 5 C). Utilstrækkelig blanding af blodprøvetagningsrør. Ufuldstændig vask af ELISA-pladen. Hvis der er mistanke om tekniske problemer med indsamling eller håndtering af blodprøverne, gentages hele QF-CMV-testen med nye blodprøver. Gentagelse af ELISA-testen af stimulerede plasmaprøver kan udføres, hvis der er mistanke om proceduremæssig afvigelse i forbindelse med ELISA-testen. Ubestemmelige resultater (som følge af lave Mitogen-værdier) forventes ikke at ændre sig ved gentagelse, medmindre der skete en fejl ved ELISA-testen. Koagulerede plasmaprøver Hvis der opstår fibrinkoagulater ved længere opbevaring af plasmaprøver, skal prøverne centrifugeres til bundfældet koaguleret materiale og lette pipetteringen af plasma. Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/

26 Fejlfindingsvejledning Denne fejlfindingsvejledning kan være nyttig til at afhjælpe eventuelle problemer. For yderligere information henvises også til Technical Information (Teknisk information) på: Du kan få oplysninger om kontaktoplysninger til teknisk service ved at se bagsiden eller besøge Fejlfinding af ELISA Lave aflæsningsværdier for optisk densitet for standarder Mulig årsag Løsning a) Fejl ved fortynding af standard Sørg for, at fortyndingerne af Kitstandard fremstilles korrekt i henhold til indlægssedlen til QF-CMV ELISA. b) Pipetteringsfejl Sørg for, at pipetterne kalibreres og anvendes i henhold til producentens instruktioner. c) For lav inkuberingstemperatur Inkubering af ELISA bør ske ved stuetemperatur (22 ± 5 C). d) For kort inkuberingstid Inkubering af pladen med konjugatet, standarderne og prøverne bør ske i 120 ± 5 minutter. Enzymsubstratopløsning inkuberes på pladen i 30 minutter. e) Brug af forkert pladelæserfilter Pladen bør aflæses ved 450 nm med et referencefilter mellem 620 og 650 nm. f) For kolde reagenser Alle reagenser, med undtagelse af konjugat 100 koncentrat, skal bringes til stuetemperatur inden påbegyndelse af analysen. Dette tager ca. 1 time. g) Kittets/komponenternes udløbsdato er overskredet Sørg for, at kittet anvendes inden udløbsdatoen. Sørg for, at rekonstitueret standard og konjugat 100 koncentrat anvendes inden for 3 måneder efter rekonstitueringsdatoen. Uspecifik farveudvikling Mulig årsag Løsning a) Ufuldstændig vask af pladen Vask pladen mindst 6 gange med 400 µl vaskebuffer pr. brønd. Alt efter hvilken vaskemaskine, der anvendes, kan der være behov for mere end 6 vaskecyklusser. Der bør være en iblødsætningsperiode på mindst 5 sekunder mellem hver cyklus. b) Krydskontaminering af ELISAbrønde c) Kittets/komponenternes udløbsdato er overskredet d) Kontamineret enzymsubstratopløsning e) Blanding af plasma i centrifugerør inden opsamling Vær forsigtig ved pipettering og blanding af prøver for at minimere risici. Sørg for, at kittet anvendes inden udløbsdatoen. Sørg for, at rekonstitueret standard og konjugat 100 koncentrat anvendes inden for tre måneder efter rekonstitueringsdatoen. Bortskaf substratet, hvis der er blåfarvning. Sørg for, at der anvendes rene reagensreservoirer. Sørg for, at plasmaprøver opsamles forsigtigt oven over gelen uden at pipettere op og ned. Pas på ikke at hvirvle materialet på gelens overflade op. 26 Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/2015

27 Fejlfinding af ELISA Høj baggrund Mulig årsag Løsning a) Ufuldstændig vask af pladen Vask pladen mindst 6 gange med 400 µl vaskebuffer pr. brønd. Alt efter hvilken vaskemaskine, der anvendes, kan der være behov for mere end 6 vaskecyklusser. Der bør være en iblødsætningsperiode på mindst 5 sekunder mellem hver cyklus. b) For høj inkuberingstemperatur Inkubering af ELISA bør ske ved stuetemperatur (22 ± 5 C). c) Kittets/komponenternes udløbsdato er overskredet d) Kontamineret enzymsubstratopløsning Sørg for, at kittet anvendes inden udløbsdatoen. Sørg for, at rekonstitueret standard og konjugat 100 koncentrat anvendes inden for 3 måneder efter rekonstitueringsdatoen. Bortskaf substratet, hvis der er blåfarvning. Sørg for, at der anvendes rene reagensreservoirer. Ikke-lineær standardkurve og variabilitet i dobbeltbestemmelse Mulig årsag Løsning a) Ufuldstændig vask af pladen Vask pladen mindst 6 gange med 400 µl vaskebuffer pr. brønd. Alt efter hvilken vaskemaskine, der anvendes, kan der være behov for mere end 6 vaskecyklusser. Der bør være en iblødsætningsperiode på mindst 5 sekunder mellem hver cyklus. b) Fejl ved fortynding af standard Sørg for, at fortyndingerne af Kitstandard fremstilles korrekt i henhold til indlægssedlen til QF-CMV ELISA. c) Dårlig blanding Bland reagenserne grundigt ved at vende dem eller forsigtigt vortexe dem, før de tilsættes pladen. d) Inkonsekvent pipetteringsteknik eller afbrydelse under opsætningen af analysen Prøven og standardtilsætningen skal udføres kontinuerligt. Alle reagenser skal forberedes, før analysen påbegyndes. Se en video over analyseproceduren og løsninger på de fleste tekniske problemer på Gnowee på Produktoplysninger og tekniske vejledninger kan fås hos QIAGEN via din forhandler eller ved at besøge Indlægsseddel til QuantiFERON-CMV ELISA 02/