Kode K4006 Følgende materialer følger med dette kit og rækker til 150 vævssnit, baseret på 100 µl pr. Snit:

Transkript

1 Dako EnVision+ System-HRP (DAB) Til brug med mus primære antistoffer Kode K ml Kode K ml Tilsigtet anvendelse Anvendes til in vitro diagnostik. Denne vejledning gælder for Dako EnVision + System, Peroxidase-HRP. Dette kit er beregnet til brug med primære antistoffer fra mus (leveret af brugeren) ved kvalitativ identifikation af antigener med lysmikroskopi i normale og patologiske paraffinindstøbte væv, kryostatvæv eller cellepræparater. Væv der er behandlet med en række forskellige fikeringsmidler inkl. ethanol, B-5, Bouin s, zinkformalin og neutral bufferet formalin, kan anvendes. Resumé og forklaring Procedureprincip Leverede reagenser The Dako EnVision+ System, HRP er en to-trins IHC-farvningsteknik. Systemet er baseret på et HRP-mærket polymer som er konjugeret med sekundære antistoffer. Det mærkede polymer indeholder ikke avidin eller biotin. Ikke-specifik farvning fra endogen avidin-biotin-aktivitet i lever, nyre, lymfevæv og kryostatsnit er derfor elimineret eller væsentligt nedsat. Alle reagenser i Dako EnVision+ System, HRP, ekskl. Liquid DAB+ Substrate-Chromogen er brugsklare. Dette system er en meget følsom metode, og optimale fortyndinger af det primære antistof er derfor op til 20 gange højere end de fortyndinger der anvendes ved den traditionelle PAPteknik, og mange gange større end dem der anvendes ved traditionelle ABC- eller LSAB-metoder. Denne protokol har et forbedret signalsystem til påvisning af antigener der er til stede i lave koncentrationer eller til primære antistoffer med lav titer. Primære antistoffer fra mus reagerer godt med det mærkede polymer. Fortolkning af eventuel positiv farvning eller mangel på samme bør suppleres af morfologiske og histologiske undersøgelser med ordentlige kontroller. Eventuel endogen peroxidaseaktivitet undertrykkes ved inkubation af prøven med en peroxidaseblokker. Prøven inkuberes derefter med et passende karakteriseret og fortyndet mus primært antistof efterfulgt af inkubation med det mærkede polymer, idet der anvendes to sekventielle inkubationer på hver 30 minutter. Det bør bemærkes at ved antistoffer der kræver enzymnedbrydning eller genfinding af target, kan det være nødvendigt at øge inkubationstiderne for det primære antistof og det mærkede polymer med 5 10 minutter. Farvning afsluttes med inkubation i 5 10 minutter med 3.3'-diaminobenzidin (DAB)+ substratkromogen, hvilket giver et brunligt præcipitat på antigen-sitet. (DAB er et potentielt carcinogen, se afsnittet Forholdsregler). Kode K4006 Følgende materialer følger med dette kit og rækker til 150 vævssnit, baseret på 100 µl pr. Snit: Mængde 1x15 ml Beskrivelse Peroxidase Block 0,03% hydrogenperoxid indeholdende natriumazid. 1x15 ml Labelled Polymer Peroxidase-mærket polymer konjugeret til ged anti-mus immunglobuliner i tris-hcl buffer indeholdende stabiliserende protein og et anti-mikrobielt stof. 1x18 ml Substrate Buffer Subtratbufferopløsning, ph 7,5 indeholdende hydrogenperoxid og et konserveringsmiddel. 1x1 ml DAB+ Chromogen 3.3 -diaminobenzidin-kromogenopløsning. ( ) P04045DK_01_K4006_K4007/ s. 1/7

2 Kode K4007 Følgende materialer følger med dette kit og rækker til 1100 vævssnit, baseret på 100 µl pr. snit. Mængde 1x110 ml Beskrivelse Peroxidase Block 0,03% hydrogenperoxid indeholdende natriumazid. 1x110 ml Labelled Polymer Peroxidase-mærket polymer konjugeret til ged anti-mus immunglobuliner i tris-hcl buffer indeholdende stabiliserende protein og et anti-mikrobielt stof. 1x120 ml Substrate Buffer Bustratbufferopløsning, ph 7,5 indeholdende hydrogenperoxid og et konserveringsmiddel. 1x5 ml DAB+ Chromogen 3.3 -diaminobenzidin-kromogenopløsning. Tilbehør 1 Kalibreret prøverør 1 Pasteur-pipette i plastik Nødvendige materialer der ikke medfølger Absorberende gaze Kontrolvæv, positive og negative Kontrastfarve, vandbaseret, f.eks. Mayer s Hematoxylin eller Lillie s Modified Mayer s Hemtoxylin (kode S3309) Dækglas Destilleret vand Ethanol, absolut og 95% Lysmikroskop (20x 800x) Monteringsmidler, f.eks. Glycergel Mounting Medium (kode C0563) eller Faramount, Aqueous Mounting Medium, Ready-to-use (kode S3025) eller ikke-vandbaseret, permanent monteringsmiddel, Ultramount (kode S1964) Primære antistoffer og negativ kontrolreagens Objektglas, coated med poly-l-lysin eller Silanized Slides (kode S3003) Farvningsbeholdere eller bade Timer (til 3 40 minutters intervaller) Vaskeflasker Vaskebufferopløsning Xylen, toluen eller xylen-substitutter Følgende materialer kan anvendes, men medfølger ikke Ammoniumhydroxid, 15 mol/l fortyndet til 0,037 mol/l PAP-pen (kode S2002). Forholdsregler 1. Må kun anvendes af uddannet personale. 2. Produktet indeholder natriumazid (NaN 3), et kemikalie der er yderst giftigt i ren form. Selvom koncentrationen i produktet ikke er klassificeret som farlig, kan ophobninger af NaN 3 reagere med bly- og kobberafløb og danne meget eksplosive metalazider. Ved bortskaffelse skylles med rigelige mængder vand for at hindre ophobning af metalazid i afløb. 1,2 3. Reagenser må ikke anvendes efter den udløbsdato der er angivet for den foreskrevne opbevaringsmetode. Reagenser der opbevares under andre betingelser end dem der er angivet på indlægssedlen, skal godkendes af brugeren. 4. Der må ikke anvendes reagenser fra andre lotnumre eller fra andre producenters kits. 5. Enzymer og substratkromogener kan blive forringet hvis de udsættes for stærkt lys. Opbevar ikke kittets dele og udfør ikke farvning i stærkt lys, f.eks. direkte sollys. 6. Inkubationstider eller -temperaturer der afviger fra de angivne, kan give fejlagtige resultater. Sådanne ændringer skal godkendes af brugeren. 7. Som med alle produkter afledt fra biologiske kilder bør der iagttages korrekte håndteringsprocedurer. 8. Der skal bæres personligt beskyttelsesudstyr så kontakt med øjne og hud undgås. 9. Ubrugt opløsning skal bortskaffes i henhold til lokale og nationale bestemmelser. 10. Sikkerhedsdataark udleveres til professionelle brugere efter anmodning. ( ) P04045DK_01_K4006_K4007/ s. 2/7

3 Fare DAB+ Chromogen: 1-5% biphenyl-3,3',4,4'-tetrayltetraammonium tetrachloride H350 Kan fremkalde kræft. H341 Mistænkt for at forårsage genetiske defekter. P201 Indhent særlige anvisninger før brug. P202 Anvend ikke produktet, før alle advarsler er læst og forstået. P281 Anvend de påkrævede personlige værnemidler. P308 + P313 VED eksponering eller mistanke om eksponering: Søg lægehjælp. P405 Opbevares under lås. P501 Indholdet og beholderen bortskaffes i henhold til alle lokale, regionale, nationale og internationale regler. Opbevaring Reagenser i Dako EnVision+ System, HRP skal opbevares ved 2 8 C. Må ikke fryses. Må ikke anvendes efte r udløbsdatoen der er trykt på reagensglas og kittets mærkat. Ændringer i udseendet på en reagens, f.eks. bundfald, kan være et tegn på at reagensen er ustabil eller forringet. I sådanne tilfælde må reagensen (-erne) ikke anvendes. Der er ingen synlige tegn på at disse produkter kan være ustabile. Positive og negative kontroller bør derfor testes samtidig med patientprøverne. Kontakt Dako s tekniske service hvis der observeres uventet farvning som ikke kan forklares med variationer i laboratorieprocedurer, og der er mistanke om et problem med kittet. Klargøring af reagens Det er praktisk at fremstille følgende reagenser før farvning: Vaskebufferopløsning TBST, 0.05 mol/l Tris Buffered Saline med Tween (kode S3006) anbefales som vaskebuffer ved automatisk og manuel IHC-påvisning. TBS, 0.05 mol/l Tris Buffered Saline (kode S1968) og PBS, 0.02 mol/l Phosphate Buffered Saline (kode S3024) er også velegnede vaskeopløsninger ved manuel farvning. Vaskebufferopløsninger der indeholder natiriumazid, kan ikke anbefales. Natriumazid inaktiverer peroxidase fra peberrod (HRP) med negativ farvning som resultat. Ubrugt buffer opbevares ved 2 8 C. Uklar buffer bør kasseres. Der kan anvendes destilleret vand til at skylle peroxidaseblokker, substrat og kontrastfarve. Primært antistof Koncentrerede antistoffer kan rekvireres fra Dako. Det er imidlertid op til brugeren at eksperimentere sig frem til den optimale fortynding. På grund af den høje følsomhed af Dako EnVision+ System, HRP, kan primært antistof fortyndes fem til femogtyve gange så meget som ved traditionelle IHC-metoder. Fortyndinger bør fremstilles med 0,05 mol/l tris-hcl-buffer, ph 7,2 7,6, indeholdende 1% kvægserumalbumin (Antibody Diluent, kode S0809). En inkubationstid på 30 minutter er tilstrækkelig til de fleste primære antistoffer der anvendes med dette kit. Brugsklare antistoffer i NP-series Plus er optimerede og anbefales til brug med Dako Plus højfølsomme detektionssystemer. Koncentrerede antistoffer kan også rekvireres fra Dako. Optimering af koncentrerede antistoffer skal udføres af slutbrugeren. Fortyndinger bør fremstilles med Antibody Diluent (kode S0809) eller en diluent der indeholder 0,05 mol/l tris-hcl-buffer med 1% kvægserumalbumin (BSA). Dako s N-series brugsklare antistoffer er ikke optimeret til brug med Dako Plus detektionssystemer. Negativ kontrolreagent Ideelt set skal en negativ kontrolreagens helst indeholde et antistof der ikke udviser specifik reaktivitet med humant væv eller normal/ikke-immun serum i samme matrix/opløsning som det fortyndede primære antistof. Den negative kontrolreagens bør tilhøre samme underklasse og dyreart som det primære antistof, fortyndet til samme immunglobulin- eller proteinkoncentration som det fortyndede antistof under anvendelse af den samme diluent. Inkubationstiden for den negative kontrolreagens bør være den samme som for det primære antistof. Universal Negative Control(s)+ anbefales som negativ kontrolreagens ved brug af Dako NP-Series Plus brugsklare antistoffer. Disse kontroller er optimeret til brug med brugsklare mus (kode NP015) eller kanin (kode NP001) antistoffer i NP-series Plus. Der henvises til afsnittet Kvalitetskontrol for yderligere oplysninger om klargøring af negative kontrolreagenser. Substratkromogenopløsning Den nedennævnte protokol til fremstilling af 1 ml substratkromogenopløsning rækker til op til ti vævssnit eller op til fem celleudstrygninger. TRIN 1 Afhængig af hvor mange objektglas der skal farves, overføres tilstrækkelig alikvotte mængder buffer `````````````på hver 1 ml (Buffer Substrate) til det kalibrerede prøverør der følger med kittet. ( ) P04045DK_01_K4006_K4007/ s. 3/7

4 TRIN 2 For hver 1 ml buffer tilsættes én dråbe (20 µl) (Liquid DAB+ Chromogen). Bland straks og kom blandingen på vævssnittene vha. den medfølgende Pasteur-pipette. Den fremstillede substratkromogenopløsning er stabil i ca. fem dage ved opbevaring ved 2 8 C. Opløsnin gen skal blandes grundigt før brug. Et eventuelt præcipitat der dannes i opløsningen, påvirker ikke blandingens farveevne. Skyl prøverør og pipette grundigt hver gang de har været brugt. Hvis de 18 ml substratbuffer der leveres med K4006 opbruges helt, rækker de til 150 tests. Ubrugt buffer kan forblive i beholderen. Hvis de 120 ml substratbuffer der leveres med K4007 opbruges helt, rækker de til 1100 tests. Ubrugt buffer kan forblive i beholderen. Kontrastfarvning Det farvede produkt der er resultatet af farvereaktionen, er uopløseligt i alkohol og kan anvendes med alkoholeller vandbaserede kontrastfarver, f.eks. Mayer s Hematoxylin eller Lillie s Modified Mayer s Hematoxylin (kode S3309). Efter kontrastfarvning med hæmatoxylin skylles objektglassene grundigt med destilleret vand hvorefter objektglassene nedsænkes i et bad af 0,037 mol/l ammoniak eller lignende blåfarvningsmiddel. 0,037 mol/l ammoniakvand fremstilles ved at blande 2,5 ml af 15mol/L (koncentreret) ammoniumhydroxid med 1 liter vand. Ubrugt 0,037 mol/l ammonium er holdbar i op til 12 måneder ved opbevaring i stuetemperatur (20 25 C) i en godt tillukket flaske. Se producentens vejledning for alternative kontrastfarvningsprocedurer. Monteringsmidler Glycergel Mounting Medium (kode C0563) eller Faramount, Aqueous Mounting Medium, Ready-to-use (kode S3025) anbefales som vandbaserede monteringsmidler. Glycergel skal opvarmes til mindst 50 C før brug. Nonaqueous permanent mounting medium (Ultramount, kode S1964) kan også anvendes. Klargøring af prøve Der henvises til General Instructions for Immunohistochemical Staining og/eller antistof-specifikationsarket. Før immunhistokemisk farvning skal vævene fikseres og bearbejdes. Fiksering forhindrer autolyse og forrådnelse af udskårne væv, bevarer antigeniciteten, fremmer vævsbestanddelenes refraktive indeks og øger celleelementers modstand mod vævsbearbejdning. Vævsbearbejdning omfatter dehydrering, fjernelse af dehydreringsmidler, infiltrering med indstøbningsmidlet, indstøbning og udskæring af væv. De mest almindelige fikseringsmidler til immunhistokemiske vævspræparater beskrives i de generelle instruktioner. De nævnte instruktioner er kun vejledende. Brugeren skal selv bestemme og bekræfte bedst mulig procedure. Farvningsprocedure Kommentarer til proceduren Brugeren bør læse denne vejledning grundigt igennem og gøre sig bekendt med indholdet af kittet før det anvendes. Reagenserne og den medfølgende vejledning i dette kit er beregnet på optimal ydelse. Yderligere fortynding af reagenserne i kittet eller ændring af inkubationstider eller -temperaturer kan medføre fejlagtige resultater. Alle reagenser skal opnå stuetemperatur (20 25 C) før immunfarvning. Alle inkubationer skal ligeledes udføres ved stuetemperatur. Sørg for at vævssnit ikke tørrer ud under farvningsproceduren. Tørre vævssnit kan udvise mere ikke-specifik farvning. Objektglas der kan blive udsat for træk, skal tildækkes. Hvis der anvendes lange inkubationstider, skal vævene anbringes i et fugtigt miljø. Dako EnVision+ System, HRP s følsomhed kan øges yderligere ved at forlænge inkubationstiderne i trin 2 og 3 med 5 10 minutter. Farvningsprotokol TRIN 1 PEROXIDASEBLOKKER Overskydende buffer bankes af. Tør forsigtigt omkring prøven med en fnugfri serviet (f.eks. Kimwipe eller gaze) så overskydende væske fjernes og det sikres at reagensen forbliver i det foreskrevne område. Tilsæt tilstrækkelig Peroxidase Block til at dække prøven. Inkubér i 5 (±1) minutter. Skyl forsigtigt med destilleret vand eller bufferopløsning fra en vaskeflaske (sørg for ikke at rette væsken direkte mod vævet), og anbring objektglasset i et friskt bufferbad. TRIN 2 PRIMÆRT ANTISTOF ELLER NEGATIV KONTROLREAGENS Bank overskydende buffer af, og tør objektglassene af som før. Tilsæt tilstrækkelig optimalt fortyndet primært antistof eller negativ kontrolreagens til at dække prøven. Inkubér i 30 (±1) minutter. Skyl forsigtigt med bufferopløsning fra en vaskeflaske (sørg for ikke at rette væsken direkte mod vævet) og anbring objektglasset i et friskt bufferbad. ( ) P04045DK_01_K4006_K4007/ s. 4/7

5 Hvis det bliver nødvendigt at afbryde farvningsproceduren, kan objektglas opbevares i et bufferbad efter inkubation af det primære antistof (trin 2) i op til en time ved stuetemperatur (20 25 C) uden at det påvirker resultatet. TRIN 3 TRIN 4 TRIN 5 TRIN 6 PEROXIDASE-MÆRKET POLYMER Bank overskydende buffer af, og tør objektglassene af som før. Tilsæt tilstrækkelig Labelled Polymer til at dække prøven. Inkubér i 30 (±1) minutter. Skyl objektglassene som i trin 2 SUBSTRATKROMOGEN Tør objektglassene af som før. Tilsæt tilstrækkelig af den fremstillede Liquid DAB+ Substrate-Chromogen-opløsning til at dække prøven (se. afsnittet Klargøring af reagens). Inkubér i 5 10 minutter. Skyl forsigtigt med destilleret vand fra en vaskeflaske (sørg for ikke at rette væsken direkte mod vævet). Substratkromogenopløsning skal indsamles i en beholder til farligt affald og bortskaffes korrekt. HÆMATOXYLIN KONTRASTFARVE (valgfri) Objektglassene nedsænkes i et bad af hematoxylin (kode S3309). Inkubationstiden afhænger af styrken på det anvendte hæmatoxylin. Skyl forsigtigt i et bad af destilleret vand. Dyp objektglassene 10 gange i et bad af 0,037 mol/l ammoniak eller lignende blåfarvningsmiddel. Skyl objektglassene i et bad af destilleret eller deioniseret vand i 2 5 minutter. MONTERING Prøver skal monteres og dækkes med dækglas under anvendelse af et vandbaseret monteringsmiddel, f.eks. Glycergel Mounting Medium (kode C0563) eller Faramount (kode S3025) eller nonaqueous permanent mounting media, Ultramount (kode S1964). Objektglas kan også dehydreres og monteres permanent. Kvalitetskontrol Forskelle i behandling af vævsprøver og tekniske procedurer på brugerens laboratorium kan medføre betydelig udsving i resultaterne og nødvendiggøre regelmæssige interne kontroller i tilslutning til nedennævnte procedurer. Se vejledningen for kvalitetskontrol fra College of American Pathologists (CAP) Certification Program for Immunohistochemistry og referencerne 3 5 for yderligere oplysninger. Se de enkelte specifikationsark for de anvendte primære antistoffer for oplysninger om følsomhed og immunreaktivitet. Se General Instructions for Immunohistochemical Staining for yderligere oplysninger om positive og negative kontroller. Fortolkning af farvningsresultat Begrænsninger Se General Instructions for Immunohistochemical Staining for fortolkningsvejledning. Vævsfarvning kræver at vævet er blevet håndteret og behandlet korrekt før farvning. Forkert fiksering, frysning, optøning, vask, tørring, opvarmning, udskæring eller kontamination med andre væv eller væsker kan give artefakter, optagelse af antistoffer eller falskt negative resultater. Brug af gamle fikseringsmidler eller fikseringsmidler der ikke er tilsat buffer, kan mindske farvefølsomheden. Det samme gælder hvis vævene udsættes for høj varme (temperaturer over 60 C) under bearbejdning. Endogen peroxidase- eller pseudoperoxidaseaktivitet kan observeres i hæmoproteiner såsom hæmoglobin, myoglobin, cytochrom, katalase samt eosinofiler. 6,7 Denne aktivitet kan hæmmes ved inkubation af prøver med Peroxidase Block i Dako EnVision+ System, HRP i 5 minutter før tilsætning af det primære antistof. Blod- og knoglemarvsudstrygninger og frosne væv kan også behandles med denne reagens. Denne procedure fjerner imidlertid ikke det rødbrune pigment fra hæmoproteiner. Alternativt kan man anvende en opløsning af methanol-hydrogenperoxid. Visse antigener kan blive denatureret som følge af denne procedure. Væv fra personer inficeret med hepatitis B-virus som indeholder hepatitis B-overfladeantigen (HBsAg), kan udvise ikke-specifik farvning med peroxidase fra peberrod. 8 Normale/ikke-immune sera fra samme dyreart som de sekundære antisera der anvendes i blokeringstrin, kan give falskt negative eller falskt positive resultater pga. autoantistoffer eller naturlige antistoffer. De reagenser der følger med dette kit, er blevet fortyndet optimalt. Yderligere fortynding kan forringe antigenpåvisningen. Se General Instructions for Immunohistochemical Staining for oplysninger om almindelige begrænsninger. ( ) P04045DK_01_K4006_K4007/ s. 5/7

6 Fejlfinding Problem Mulig årsag Løsningsforslag 1. Ingen objektglas blev farvet. 2. Svag farvning af alle objektglas. 3. For høj baggrundsfarvning på alle objektglas. 1a. Reagenser brugt i forkert rækkefølge. 1b. Natriumazid i bufferbad. 2a. For meget opløsning på vævssnittene efter vaskebadet. 2b. Objektglas ikke inkuberet længe nok med antistoffer eller substrat. 3a. Prøverne indeholder høj endogen peroxidase-aktivitet. 3b. Paraffin ikke fjernet fuldstændigt. 3c. Objektglas ikke skyllet ordentligt. 3d. Hurtigere end normal substratreaktion pga. for høj rumtemperatur. 3e. Vævssnittene tørrede ud under farvning. 3f. Ikke-specifik binding af reagenser til vævssnit. 3g. Antistoffet er for koncentreret. 1a. Tjek anvendelse af reagenser. 1b. Brug frisk, azidfri buffer 2a. Bank forsigtigt overskydende opløsning af før der tørres rundt om snittet. 2b. Tjek anbefalede inkubationstider. 3a. Brug længere inkubationstid for peroxidaseblokkeren. 3b. Brug friske xylen- eller toluenbade. Hvis flere objektglas farves samtidig, skal det andet xylenbad indeholde frisk xylen. 3c. Brug friske opløsninger i bufferbade og vaskeflasker. Brug TBST som wash buffer (kode S3306). 3d. Brug kortere inkubationstid med substratkromogenopløsning. 3e. Brug fugtighedskammer. Tør kun 3 4 objektglas af ad gangen før tilsætning af reagens. 3f. Tilsæt en blokerende opløsning der indeholder protein. 3g. Brug en mere fortyndet opløsning af primært antistof. BEMÆRK: Hvis problemet ikke skyldes en af ovennævnte årsager eller hvis den foreslåede løsning ikke løser problemer, bedes De ringe til Dako s tekniske service for yderligere assistance. Yderligere oplysninger om farveteknikker og klargøring af prøver findes i Handbook Immunochemical Staining Methods 9 (kan rekvireres fra Dako), Atlas of Immunohistology 10 og Immunoperoxidase Techniques, A Practical Approach to Tumor Diagnosis. 11 Referencer 1. Department of Health, Education and Welfare, National Institute for Occupational Safety and Health, Rockville, MD. Procedures for the decontamination of plumbing systems containing copper and/or lead azides. DHHS (NIOSH) Publ. No , Current 13. August 16, Center for Disease Control Manual Guide - Safety Management, No. CDC 22, Atlanta, Georgia. April 30, Decontamination of laboratory sink drains to remove azide salts. 3. Elias JM, et al. Special report: Quality control in immunohistochemistry. Amer J Clin Pathol 1989; 92: National Committee for Clinical Laboratory Standards. Internal quality control testing: principles and definitions; approved guideline. Villanova, PA 1991; Order code C24 A:4 5. Herman GE and Elfont EA. The taming of immunohistochemistry: The new era of quality control. Biotech & Histochem 1991; 66: Escribano LM, et al. Endogenous peroxidase activity in human cutaneous and adenoidal mast cells. J Histochem Cytochem 1987; 35: Elias JM. Immunohistopathology: A practical approach to diagnosis. Chicago: Amer Soc of Clin Pathol Press 1990; Omata M, et al. Nonimmunologic binding of horseradish peroxidase to hepatitis B surface antigen: A possible source of error in immunohistochemistry. Amer J Pathol 1980; 73: Naish SJ (ed). Handbook immunochemical staining methods. Carpinteria: Dako Tubbs RR, et al. Atlas of immunohistology. Chicago: Amer Soc Clin Pathol Press Nadji M and Morales AR. Immunoperoxidase techniques, a practical approach to tumor diagnosis. Chicago: Amer Soc Clin Pathol Press 1986 Yderligere referencer Cartun RW. Immunohistochemistry of infectious diseases. J Histotechnol 1995; 18(3):195 Heras A, et al. Enhanced labelled-polymer system for immunohistochemistry. XVth Eur Cong Pathol. Copenhagen, Denmark 1995; Sept 3 8 Bisgaard K and Pluzek K-P. Use of polymer conjugates in immunohistochemistry: A comparative study of a traditional staining method to a staining method utilizing polymer conjugates. Abstract. XXI Intl Cong Intl Acad Pathol and 12th World Cong Acad Environ Pathol. Budapest, Hungary 1996; Oct Pileri SA, et al. EnVision Plus: A new powerful tool for diagnosis and research. Symposium. XXI Intl Cong Intl Acad Pathol and 12th World Cong Acad Environ Pathol. Budapest, Hungary 1996; Oct Bisgaard K. EnVision Plus Introduction to a new technology. Abstract. DAKO Symposium. XXI Intl Cong Intl Acad Pathol. Budapest, Hungary 1996; Oct ( ) P04045DK_01_K4006_K4007/ s. 6/7

7 Edition 07/15 ( ) P04045DK_01_K4006_K4007/ s. 7/7