artus Mycobac. diff. LC PCR Kit Håndbog

Transkript

1 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit Håndbog 24 (katalog nr ) 96 (katalog nr ) Kvantitativ in vitro diagnostik Til anvendelse med LightCycler 1.1/1.2/1.5 og LightCycler 2.0 Instrument Marts 2015 version , DA QIAGEN GmbH, QIAGEN Strasse 1, Hilden, TYSKLAND R DA Sample & Assay Technologies

2 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit Mærker og ansvarsfraskrivelse QIAGEN, QIAamp, artus (QIAGEN Group); LightCycler (Roche Group); Triton (Union Carbide Corporation). Registrerede navn, varemærker, osv. i dette dokument kan ikke betragtes som juridisk ubeskyttede, selvom de mangler en tilsvarende kendetegnelse. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit er et CE-mærket diagnostisk kit i overenstemmelse med den europæiske retningslinje 98/79/EF om in vitro-diagnostik. Kan ikke fås i alle lande. For opdateret licensinformation og produktspecifikke ansvarsfraskrivelser henvises til den aktuelle QIAGEN kithåndbog eller brugervejledning. QIAGEN kit-håndbøger og brugervejledninger kan findes på eller kan rekvireres fra QIAGENs tekniske serviceafdeling eller den lokale leverandør. Ved købet af dette produkt erhverver brugeren tilladelse til at bruge det til udførelse af diagnostiske serviceydelser til human in vitro-diagnostik. Derved gives intet generelt patent eller nogen anden tilladelse af nogen art ud over denne specifikke ret til anvendelse. KØBET AF DETTE PRODUKT GIVER KØBEREN RETTIGHEDER UNDER EN ELLER FLERE AF AMERIKANSKE PATENTNR. 6,174,670, 7,160,998, 6,569,627, 6,245,514, 5,804,375, 5,210,015, 5,487,972, 6,214,979 OG 7,141,377 OG DERES UDENLANDSKE MODPARTER TIL KUN AT ANVENDE DETTE PRODUKT TIL FORMIDLING AF HUMANE OG ANIMALSKE IN VITRO-DIAGNOSTISKE TJENESTER. DERVED GIVES INTET GENERELT PATENT ELLER NOGEN ANDEN TILLADELSE AF NOGEN ART UD OVER DENNE SPECIFIKKE RET TIL ANVENDELSE. Aftale om begrænset licens Brug af dette produkt betyder, at enhver køber eller bruger af artus Mycobac. diff. LC PCR-kittet accepterer følgende vilkår: 1. artus Mycobac. diff. LC PCR-kittet må kun anvendes i henhold til artus Mycobac. diff. LC PCR-kittets håndbog og kun sammen med komponenterne indeholdt i kittet. QIAGEN giver ingen licens, under nogen intellektuel ejendomsret, til at bruge eller inkorporere komponenterne i dette kit med komponenter, der ikke er inkluderet i dette kit, undtagen som beskrevet i artus Mycobac. diff. LC PCR-kittets håndbog og yderligere protokoller, som er tilgængelige på 2. Ud over de udtrykkeligt givne licenser giver QIAGEN ingen garanti for, at dette kit, og/eller brugen af det, ikke overtræder tredjeparts rettigheder. 3. Dette kit og dens komponenter er under licens til engangsbrug og må ikke genbruges, genoprettes eller videresælges. 4. QIAGEN afviser specifikt alle andre licenser, udtrykte eller underforståede, end dem, der udtrykkeligt er angivet. 5. Køberen og brugeren af kittet indvilliger i ikke at tage, eller lade andre tage, skridt der kunne føre til, eller fremme, handlinger der forbydes ovenfor. QIAGEN kan håndhæve forbudene i denne begrænsede licensaftale i enhver ret, og vil inddrive alle undersøgelses- og retsomkostninger, herunder advokatsalærer, i ethvert søgsmål for at håndhæve denne begrænsede licensaftale samt alle deres intellektuelle ejendomsrettigheder i forbindelse med kittet og/eller komponenterne deri. For opdaterede licensbetingelser henvises til QIAGEN. Alle rettigheder forbeholdes.

3 Indholdsfortegnelse 1. Indhold Opbevaring Nødvendige ekstra-materialer og instrumenter Almindelige sikkerhedsregler Information om smittefare Princip for Real-Time PCR Produktbeskrivelse Protokol DNA-isolering Intern Kontrol Kvantificering Forberedelse af PCR Programmering af LightCycler instrumenterne Programmering af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet Programmering af LightCycler 2.0 instrumentet Analyse Analyse af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrument PCR-dataene Analyse af LightCycler 2.0 instrument PCR-dataene Fejlkilder Specifikationer Analytisk sensitivitet Specificitet Præcision Robusthed artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015 3

4 11.5 Reproducerbarhed Diagnostisk evaluering Særlige anvisninger til brug af produktet Advarsler og forholdsregler Kvalitetskontrol Litteratur Symbolforklaring artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

5 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit Til anvendelse med LightCycler 1.1/1.2/1.5 hhv. LightCycler 2.0 instrumentet. 1. Indhold Påskrift og indhold Art. Nr reaktioner Art. Nr reaktioner Blå Mycobac. diff. LC Master 2 x 12 reaktioner 8 x 12 reaktioner Gul Mycobac. diff LC Mg-Sol 1 x 400 µl 1 x 400 µl Rød Rød Rød Rød M. tuberculosis LC QS 1 5 x 10 4 cop/µl M. tuberculosis LC QS 2 5 x 10 3 cop/µl M. tuberculosis LC QS 3 5 x 10 2 cop/µl M. tuberculosis LC QS 4 5 x 10 1 cop/µl 1 x 200 µl 1 x 200 µl 1 x 200 µl 1 x 200 µl 1 x 200 µl 1 x 200 µl 1 x 200 µl 1 x 200 µl Rød M. avium LC Control 1 x 200 µl 1 x 200 µl Rød M. intracellulare LC Control 1 x 200 µl 1 x 200 µl Grøn Mycobac. diff LC IC 1 x µl 2 x µl Hvid Water (PCR grade) 1 x µl 1 x µl QS = Kvantificeringsstandard IC = Intern Kontrol Mg-Sol = Magnesium-løsning artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015 5

6 2. Opbevaring Komponenterne i artus Mycobac. diff. LC PCR Kit skal opbevares ved 15 til 30 C og er stabile indtil den udløbsdato, der er angivet på etiketten. Gentagen optøning og nedfrysning (> 2 x) bør undgås, da sensitiviteten derved forringes. Ved uregelmæssig brug skal reagenserne derfor aliquoteres. Hvis det er nødvendigt at opbevare kittet ved +4 C, må dette tidsrum ikke vare længere end fem timer. 3. Nødvendige ekstra-materialer og instrumenter Pudderfri engangs laboratoriehandsker DNA-isoleringskit (se 8.1 DNA-isolering) Lysozym-mix (se 8.1 DNA-isolering) Pipetter (justerbare) Sterile pipettespidser med filter Vortex-mixer Bordcentrifuge med rotor til 2 ml-reaktionsbeholdere Color Compensation Set (Roche Diagnostics, kat.-nr ) til oprettelse af en Crosstalk Color Compensation-fil for LightCycler 1.1/1.2/1.5 hhv. LightCycler 2.0 instrumentet LightCycler Multicolor Demo Set (kat.-nr ) for LightCycler 2.0 instrumentet LightCycler Kapillarer (20 l) LightCycler Cooling Block LightCycler 1.1/1.2/1.5 (software version 3.5) hhv. LightCycler 2.0 (software version 4.0) instrument LightCycler Capping Tool 6 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

7 4. Almindelige sikkerhedsregler Følgende anvisninger skal altid overholdes af brugeren: Brug sterile pipettespidser med filter. Positivt materiale (prøver, kontroller, amplifikater) skal opbevares, oprenses og tilsættes reaktionsblandingen i et separat rum, adskilt fra de øvrige reagenser. Optø alle komponenter fuldstændigt ved stuetemperatur, inden testen startes. Bland komponenterne grundigt, og centrifuger kort. Der bør arbejdes hurtigt på is eller i LightCycler Cooling Block. 5. Information om smittefare Tuberkulose (TB) er indtil nu en af de mest betydningsfulde infektionssygdomme i hele verden. Det skønnes, at ca. to milliarder mennesker, en tredjedel af verdensbefolkningen, er inficeret med Mycobacterium tuberculosis, tuberkulosens smittekilde. Årligt berettes der om ca. otte millioner nye infektioner og ca. tre millioner dødsfald. Selvom landene i den tredje verden er særligt ramte, er tuberkulose en genopstået sygdom i industrinationerne, hovedsageligt på grund af indvandringen af inficerede mennesker og udviklingen af medicinresistent TB. Minoriteter, såsom hjemløse, stofmisbrugere og personer med nedsat immunforsvar, rammes uforholdsmæssigt. Tuberkulosen er en kronisk forløbende, cyklisk infektionssygdom. I primærstadiet rammes først og fremmest delområder af lungen og de tilhørende lymfeknuder af infektionen. Afhængigt af patientens immunstatus kan det dog komme til en samling af M. tuberculosis i andre organer. TB overføres primært fra person til person via aerosoler, dog udgår en smittefare kun fra personer med en åben tuberkulose. Når patientens immunforsvar svækkes, er det også flere år efter infektionen muligt, at bakterien reaktiveres (postprimærtuberculose). artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015 7

8 Mycobacterium avium og Mycobacterium intracellulare er miljøbakterier, som forekommer i vandet og i jorden. I modsætning til M. tuberculosisinfektioner smittes mennesket først og fremmest med Mycobacterium avium og Mycobacterium intracellulare gennem optagelse af med mykobakterier forurenet drikkevand og føde. Overførslen fra menneske til menneske er meget usandsynlig. Hos immunkompetente personer forløber en infektion med M. avium og M. intracellulare sædvanligvis asymptomatisk. Det forholder sig dog anderledes hos immunsupprimerede personer og særligt hos HIVinficerede personer. I størstedelen af tilfældene fører det til en massiv dissemination af bakterierne i hele kroppen, som hyppigt ender med døden. 6. Princip for Real-Time PCR Ved patogen diagnostik ved hjælp af polymerase kædereaktion (eng. Polymerase Chain Reaction = PCR) bliver specifikke områder af smitstofgenomet amplificeret. Detektionen foregår via Real-Time PCR ved hjælp af fluorescensfarver. Disse er som regel koblet til oligonukleotid-prober, som binder sig specifikt til PCR-produktet. Detektionen af fluorescensintensiteten i Real-Time PCR-kørslen gør det muligt at påvise og kvantificere produkterne, uden at skulle åbne prøverørene igen efter PCR-kørslen (Mackay, 2004). 7. Produktbeskrivelse artus Mycobac. diff. LC PCR Kit er et brugsklart system til detektion af DNA fra alle medlemmer af M. tuberculosis-kompleksen (M. tuberculosis, M. africanum, M. bovis, M. bovis BCG, M. microti, M. pinnipedii) og af M. avium-kompleksen (M. avium subsp. avium, M. avium subsp. paratuberculosis, M. avium subsp. silvaticum, M. avium subsp. hominissuis, M. intracellulare) ved hjælp af polymerase kædereaktion (PCR) i LightCycler instrumentet. Mycobac. diff. LC Master indeholder reagenser og enzymer til den specifikke amplifikation af en 163 bp lang sekvens af det mykobakterielle genom og til umiddelbar detektion af et amplifikat med LightCycler 1.1/1.2/1.5 hhv. LightCycler 2.0 instrumentet. Derudover indeholder 8 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

9 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit et andet heterologt amplifikationssystem, som bruges til detektion af en eventuel PCR-inhibition. PCR-produkt M. tuberculosis/m. aviumkompleks. LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrument Valg af fluorescenskanalerne LightCycler 2.0 instrument F2/Back-F1 640/Back 530 Mycobac. diff. LC IC F3/Back-F1 705/Back 530 Amplifikationen og detektionen af denne Interne Kontrol (IC) nedsætter ikke påvisningsgrænsen af den analytiske M. tuberculosis hhv. M. avium-pcr (se 11.1 Analytisk sensitivitet). For at adskille M. tuberculosis-kompleksen fra de forskellige M. aviumsubspecies og fra M. intracellulare benytter systemet de specifikke smeltetemperaturer for proberne. I forløbet af smeltekurven detekteres signaler i fluorescenssignalen F2 hvv. 640, for M. tuberculosis-kompleksen ved 60 C, for alle M. avium-subspecies ved 63,5 C og for M. intracellulare ved 55 C. Afhængigt af forskelle ved instrumenterne kan der opstå afvigelser af 1 2 C, som så ligeledes forekommer hos alle tre smeltepunkter. Forskellige ekstraktionsbetingelser og derud resulterende bufferkonditioner kan føre til at smeltepunktet for en prøve afviger svagt fra den for den vedlagte kontrol. Hvis afvigelsen af smeltepunktet for en prøve til den vedlagte kontrol er større end ± 1 C bør PCR en gentages. Der vedlægges eksterne positive kontroller (M. avium LC Control, M. intracellulare LC Control), som bruges til kvantificering af alle M. aviumsubspecies og af M. intracellulare. For at bestemme smitstofbelastningen for M. tuberculosis-kompleksen kan der bruges de yderligere i kittet indeholdte M. tuberculosis-kvantificeringsstandarder (M. tubercullosis LC QS 1-4). Læs dertil afsnittet 8.3 Kvantificering. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015 9

10 8. Protokol 8.1 DNA-isolering Ved undersøgelsen af store prøvevolumener eller stærkt sure prøver er det nødvendigt at opkoncentrere hhv. neutralisere materialet før DNA-isoleringen. Hvis der undersøges spyt, anbefales en NALC-NaOH-dekontamination. Mavevæske bør neutraliseres med phosphatbuffer. Efter en afsluttende centrifugering kan der arbejdes videre med bakteriepellettet. DNA-isoleringskits tilbydes af forskellige producenter. Prøvevolumener til DNA-isoleringsproceduren afhænger af den benyttede protokol. Tilsæt den anbefalede prøvemængde til oprensningen og udfør DNA-isoleringen efter producentens forskrift. Følgende isoleringskits anbefales: Prøvemateriale Oprensningskit Katalognummer Producent Carrier RNA Spyt, BAL, bronkialvæske, cerebrospinalvæske (CSF), mavevæske, peritonealpunktat QIAamp DNA Mini Kit (50) QIAGEN ikke indeholdt Vigtigt: Det er vigtigt at følge anvisningerne i Bilag D (Protocols for bacteria) beskrevet i QIAamp DNA Mini og Blood Mini-håndbogen (QIAamp DNA Mini and Blood Mini Handbook). For at sikre en effektiv og kontaminationsfri åbning af mykobakterierne anbefaler vi, nøje at følge følgende ændringer (fed skrift) til QIAamp DNA Mini Kit protokollen D: Vigtigt: Alle pipetteringstrin før inkubationen ved 95 C skal gennemføres på en biologisk sikkerheds-arbejdsbænk af klassen 2, fordi prøverne er potentielt smittefarlige. Overfør mellem 250 µl og 500 µl af den NACL-NaOH-dekontaminerede prøve i en 1,5 ml reaktionsbeholder med skruelåg. Centrifuger 10 minutter ved x g ( rpm) i en bordcentrifuge. Afpipetter forsigtigt overskudet og bortskaf dette. 10 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

11 Tilsæt 180 µl lysozym-mix til (20 mg/ml lysozym; 20 mm Tris-HCl (ph 8,0); 2 mm EDTA; 1,2 % Triton ) og resuspender pelettet ved at afpipettere og opsuge det. Inkuber prøven i minimum en time ved 37 C i en varmeblok. Derefter centrifugeres prøven kort for at fjerne dråber på indersiden af låget. Tilsæt 20 μl proteinase K og 200 μl AL buffer suppleret med carrier RNA (2 μg RNA homopolymer Poly[rA], ikke inkluderet i QIAamp DNA-minikittet, pr. 200 μl AL buffer) og valgfrit 10 μl intern kontrol (se 8.2 Intern Kontrol). Bland prøven godt ved at vortexe den. Inkuber prøven i 30 minutter ved 56 C i en varmeblok. Derefter centrifugeres prøven kort for at fjerne dråber på indersiden af låget. Inkuber prøven i 15 minutter ved 95 C (inkubationstiden må ikke overskrides, fordi DNA ellers kan degraderes). Vigtigt: Bemærk, at prøverne først efter afslutningen af inkubationen ved 95 C ikke mere er smittefarlige. Lad prøven afkøle til stuetemperatur. Derefter cenrifugeres prøven kort for at fjerne dråber på indersiden af låget. Følg Protocol: DNA Purification from Tissues (Protokol: DNA oprensning fra væv) i QIAamp DNA Mini and Blood Mini-håndbogen (anden udgave, november 2007), der starter med tilsætningen af ethanol på trin 6, og udfør den endelige DNA-eluering vha. 100 μl Buffer AE. Vigtige anvisninger for at undgå krydskontaminationer: a) Vedrørende lysen af bakterierne: Det er absolut nødvendigt at bruge reaktionsbeholdere med skruelåg. Reaktionsbeholderne skal altid være godt lukket. Centrifuger prøven kort efter hvert inkubationstrin for at fjerne dråber på indersiden af låget. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

12 Berør ikke indersiden af reaktionsbeholderens låg. Skulle dette forekomme, så skal den potentielt kontaminerede handske skiftes ud med det samme. Der frarådes principielt anvendelsen af vandbad. Det er vigtigt at sørge for, at prøverne efter 95 C-trinnet køles ned til stuetemperatur, fordi risikoen for en aerosol-formidlet kontamination ellers er ekstrem høj efter åbningen af reaktionsbeholderne. b) Vedrørende DNA-isoleringen: Sørg for, at der ikke pipetteres væske på kanten af QIAamp-søjlen. Indersiden af låget af en QIAamp-søjle må ikke berøres. Skulle dette forekomme, så skal den potentielt kontaminerede handske skiftes ud med det samme. Anvend ikke den samme pipette-spids for forskellige prøver, heller ikke ved tilsætningen af vaskebuffer AW1 og AW2 eller elueringsbuffer AE. Dette forhindrer en krydskontamination mellem prøverne og en kontamination af en buffer. Anvend hver 2 ml Collection Tube kun én gang. Skulle der ikke stå et rigeligt antal Collection Tubes til rådighed, så kan i stedet anvendes 2 ml reaktions-beholdere, hvis låg skal fjernes. Generelle anmærkninger Anvendelsen af carrier-rna er af afgørende betydning for oprensningens effektivitet og dermed for DNA-/RNA-udbyttet. Hvis det valgte isoleringskit ikke indeholder carrier RNA, skal det bemærkes, at tilsætningen af carrier (RNA Homopolymer Poly[rA]) på det stærkeste anbefales til ekstraktion af nukleinsyrer fra cellefri kropsvæsker og materiale, der har et lavt indhold af DNA/RNA (f.eks. CSF). Følg så venligst den følgende fremgangsmåde: a) Hertil resuspenderes den lyophiliserede carrier-rna i elueringsbufferen (ikke i lysisbuffer) af isoleringskittet (f.eks. Buffer AE fra QIAamp DNA Mini Kit) og fremstilles en fortynding med en koncentration på 1 µg/µl. Lav derefter af carrier-rna-løsningen et for Deres egne krav passende antal aliquoter, som skal opbevares ved -20 C. Undgå gentagen optøning (>2 x) af carrier-rna-aliquoten. 12 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

13 b) Per oprensning skal der tilsættes 1 µg carrier-rna per 100 µl lysisbuffer. Bestemmer ekstrationsprotokollen f. eks. 200 µl per oprenset prøve, så tilsæt 2 µl af carrier-rna (1 µg/µl) direkte til lysisbufferen. Før begyndelsen af oprensningen skal blandingen af lysisbuffer og carrier-rna (og i givent tilfælde Intern Kontrol, se 8.2 Intern Kontrol) fremstilles frisk efter det følgende pipetteringsskema. Antal prøver 1 12 Lysisbuffer f.eks. 200 µl f.eks µl Carrier-RNA (1 µg/µl) 2 µl 24 µl Samlet volumen 202 µl µl Volumen for oprensningen 200 µl for hver 200 µl c) Den frisk fremstillede blanding af lysisbuffer og carrier-rna skal tilsættes oprensningen med det samme. Det er ikke muligt at opbevare blandingen. Bruger man en oprensningsprotokol med ethanolholdige vaskebuffere, anbefales det, at man udfører et ekstra centrifugeringstrin (tre minutter, rpm) for at fjerne ethanolrester. Dette forhindrer eventuelle PCRinhibitioner. artus Mycobac. diff LC PCR Kit er ikke egnet til oprensningsmetoder, som arbejder på basis af phenol. Vigtigt: Den Interne Kontrol til artus Mycobac. diff. LC PCR Kit kan anvendes direkte i oprensningen (se 8.2 Intern Kontrol). 8.2 Intern Kontrol Der vedlægges en Intern Kontrol (Mycobac. diff. LC IC). Med denne er det muligt at kontrollere både oprensningen af DNA og en mulig inhibition af PCR (se Fig. 1). Til denne anvendelse tilsættes den Interne Kontrol i et forhold der svarer til 0,1 µl pr. 1 µl elueringsvolumen til oprensningen. Hvis f.eks. QIAamp DNA Mini Kit anvendes, elueres DNA i 100 μl Buffer AE, skal der tilsættes 10 µl af den Interne Kontrol. Mængden af den anvendte Interne artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

14 Kontrol er kun afhængig af elueringsvolumenet. Den Interne Kontrol og carrier-rna (se 8.1 DNA-isolering) må kun tilsættes til blandingen af lysisbuffer og prøvemateriale eller direkte til lysisbufferen. Den Interne Kontrol må ikke direkte tilsættes prøvematerialet. Ved tilsætning til lysisbufferen skal der sørges for at blandingen af den Interne Kontrol og lysisbuffer/carrier-rna forberedes frisk og tilsættes med det samme (at opbevare blandingen ved stuetemperatur eller i køleskabet kan allerede efter få timer føre til fravær af den Interne Kontrol og til en reduceret oprensningseffektivitet). Pipetter den Interne Kontrol og carrier-rna ikke direkte i prøvematerialet. Optionalt kan den Interne Kontrol anvendes udelukkende til kontrol af en mulig PCR-inhibition (se Fig. 2). Til denne anvendelse tilsættes pr. testblanding 0,5 µl af den Interne Kontrol og 2 µl Mycobac. diff. LC Mg-Sol direkte til 13 µl Mycobac. diff. LC Master. Brug til hver PCR-reaktion 15 µl af den således fremstillede Master Mix * og tilsæt derefter 5 µl af den oprensede prøve. Ved udførelsen af en kørsel med flere prøver er det nødvendigt at øge de krævede mængder af Mycobac. diff. LC Master, af Mycobac. diff. LC Mg-Sol og af den Interne Kontrol svarende til prøvetallet (se 8.4 Forberedelse af PCR). 8.3 Kvantificering Tag venligst hensyn til det sidste afsnit i kapitel 7. Produktbeskrivelse. De vedlagte Kvantificeringsstandarder (M. tuberculosis LC QS 1 4) tillader bestemmelsen af smitstofbelastningen for M. tuberculosis-kompleksen. De behandles som en allerede oprenset prøve og anvendes i samme volumen (5 µl). For at udarbejde en standardkurve i LightCycler instrumentet, tilsættes alle fire vedlagte Kvantificeringsstandarder på følgende måde: * Volumenforhøjelsen, som opstår på grund af tilsætning af den Interne Kontrol, er irrelevant. Sensitiviteten for detektionssystemet påvirkes ikke. 14 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

15 LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet Definer venligst M. tuberculosis LC QS 1-4 i Sample Loading Screen som standarer og indtast de angivne koncentrationer (se LightCycler Operator s Manual, version 3.5, chapter B, 2.4. Sample Data Entry). LightCycler 2.0 instrumentet For at definere standarderne, aktiveres venligst funktionen Analysis Type i menubaren af vinduet Samples og vælges Absolute Quantification. Nu kan M. tuberculosis LC QS 1-4 defineres som standarder og de tilsvarende koncentrationer kan indtastes (se LightCycler Operator s Manual, version 4.0, chapter 2.2 Entering Sample Information). Sørg for at funktionen Enable Controls ikke er aktiveret, fordi dette ellers fører til indskrænkninger i udvalget af analyse-optionerne ved data-analysen (se 9.2 Analyse af LightCycler 2.0 instrument PCR-dataene). Denne standardkurve kan derudover anvendes til senere kvantificeringer, hvis mindst en standard af en defineret koncentration medføres i den aktuelle kørsel. Hertil er det nødvendigt at importere den tidligere udarbejdede standardkurve (se LightCycler Operator s Manual, version 3.5, chapter B, Quantification with an External Standard Curve hhv. version 4.0, chapter Saving a Standard Curve). Der kan opstå afvigelser i resultatet på grund af variationen mellem PCR-kørslerne ved denne form for kvantificering. Bemærk: Kvantificeringsstandarderne er defineret som kopier/µl. Til omregning af værdierne, som blev udarbejdet ved hjælp af standardkurven i kopier/ml prøvemateriale, skal følgende formel anvendes: Resultat (kopier/ml) = Resultat (kopier/μl) x Elueringsvolumen (μl) Prøvevolumen (ml) Bemærk, at der principielt skal tilsættes det oprindelige prøvevolumen i den ovennævnte formel. Dette skal tages i betragtning, hvis prøvevolumenet blev forandret før nukleinsyre-oprensningen (f.eks. at den blev indsnævret ved artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

16 centrifugering eller forhøjet ved at den blev fyldt op på det volumen, som kræves for oprensningen). Vigtigt: For simplificering af den kvantitative analyse med artus-systemer på LightCycler 1.1/1.2/1.5 hhv. LightCycler 2.0 instrumentet, findes under en vejledning (Technical Note for quantitation on the LightCycler 1.1/1.2/1.5 or LightCycler 2.0 instrument). 8.4 Forberedelse af PCR Sørg for, at køleblokken (Cooling Block) med de tilhørende adaptere (tilbehør til LightCycler instrumentet) er kølet ned til +4 C. Sæt det nødvendige antal LightCycler kapillarer til de planlagte reaktioner ind i adapterne til køleblokken (Cooling Block). Bemærk, at hver PCR-kørsel medfører mindst en Kvantificeringsstandard (M. tuberculosis LC QS 1-4) eller en positiv kontrol (M. avium LC Control, M. intracellulare LC Control) samt en negativ kontrol (Water, PCR grade). Til udarbejdelse af en standardkurve til bestemmelsen af smitstofbelastningen for M. tuberculosis-kompleksen anvendes per PCRkørsel alle vedlagte Kvantificeringsstandarder (M. tuberculosis LC QS 1-4). Alle reagenser skal optøs fuldstændigt ved stuetemperatur, blandes godt (gentagen pipettering eller kort vortexen) og centrifugeres kort. For tilfældet, at De både vil kontrollere oprensningen af DNA og en mulig inhibition af PCR, skal den Interne Kontrol tilsættes oprensningen i forvejen (se 8.2 Intern Kontrol). Brug dertil følgende pipetteringsskema (se endvidere den skematiske oversigt i Fig. 1): 16 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

17 1. Opsætning af Master Mix 2. Opsætning af PCR-reaktion Antal prøver 1 12 Mycobac. diff. LC Master 13 µl 156 µl Mycobac. diff. LC Mg-Sol 2 µl 24 µl Mycobac. diff. LC IC 0 µl 0 µl Samlet volumen 15 µl 180 µl Master Mix 15 µl for hver 15 µl Prøve 5 µl for hver 5 µl Samlet volumen 20 µl for hver 20 µl Hvis De udelukkende vil anvende den Interne Kontrol til kontrol af en mulig PCR-inhibition, skal den tilsættes direkte til Mycobac. diff. LC Master. Brug i dette tilfælde følgende pipetteringsskema (se endvidere den skematiske oversigt i Fig. 2): 1. Opsætning af Master Mix 2. Opsætning af PCR-reaktion Antal prøver 1 12 Mycobac. diff. LC Master 13 µl 156 µl Mycobac. diff. LC Mg-Sol 2 µl 24 µl Mycobac. diff. LC IC 0,5 µl 6 µl Samlet volumen 15,5 µl * 186 µl Master Mix 15 µl for hver 15 µl Prøve 5 µl for hver 5 µl Samlet volumen 20 µl for hver 20 µl Pipetter 15 µl af Master Mix i PCR-plasticreservoiret til hver af kapillarerne. Derefter tilsættes 5 µl af eluatet fra DNA-isoleringen. Tilsvarende skal 5 µl af mindst en af Kvantificeringsstandarderne (M. tuberculosis LC QS 1-4) anvendes som positiv kontrol, og som negativ kontrol tilsættes 5 µl vand (Water, PCR grade). Luk kapillarerne. For at overføre opsætningen fra plasticreservoiret til kapillarerne centrifugeres adapterne med kapillarerne i en bordcentrifuge i ti sekunder ved maksimalt 400 x g (2.000 rpm). * Volumenforhøjelsen, som opstår på grund af tilsætning af Intern Kontrol, er irrelevant. Sensitiviteten for detektionssystemet påvirkes ikke. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

18 Tilsætning af Intern Kontrol til oprensningen oprensning blanding af lysisbuffer/ prøvemateriale + 0,1 µl IC* pr. 1 µl elueringsvolumen 2 µl Mg-Sol* 13 µl artus Master* 5 µl oprenset prøve* 15 µl Master Mix* optisk reaktionsplade/ optiske reaktionsbeholdere ABI PRISM SDS Fig. 1: Skematisk arbejdsforløb til kontrol af oprensning og PCRinhibition. *Det er yderst vigtigt at sørge for, at de anvendte opløsninger er fuldstændigt optøet, blandet godt og centrifugeret kort. 18 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

19 Tilsætning af Intern Kontrol til artus Master 2 µl Mg-Sol* 0,5 µl IC* 13 µl artus Master* oprensning 15,5 µl Master Mix* 5 µl oprenset prøve* 15 µl Master Mix* optisk reaktionsplade/ optiske reaktionsbeholdere ABI PRISM SDS Fig. 2: Skematisk arbejdsforløb til kontrol af PCR-inhibition. *Det er yderst vigtigt at sørge for, at de anvendte opløsninger er fuldstændigt optøet, blandet godt og centrifugeret kort. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

20 8.5 Programmering af LightCycler instrumenterne Programmering af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet Til detektion af DNA fra medlemmerne af M. tuberculosis- og fra M. aviumkompleksen udarbejder De på Deres LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrument en temperaturprofil som i de følgende fem arbejdstrin (se Fig. 3 - Fig. 7). A. Initial aktivering af Hot Start-enzymet Fig. 3 B. Touch Down trin Fig. 4 C. Amplifikation af DNA Fig. 5 D. Smeltekurve Fig. 6 E. Køling Fig. 7 Læg især mærke til indstillingerne for Analysis Mode, Cycle Program Data og Temperature Targets. Af hensyn til overskueligheden er indstillingerne, der skal foretages, fremhævet med sorte rammer i figurerne. Anvisninger til programmering af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet kan findes i LightCycler Operator s Manual. Fig. 3: Initial aktivering af Hot Start-enzymet. 20 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

21 Fig. 4: Touch Down trin. Fig. 5: Amplifikation af DNA. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

22 Fig. 6: Smeltekurve. Fig. 7: Køling. 22 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

23 8.5.2 Programmering af LightCycler 2.0 instrumentet For at programmere en PCR-kørsel med LightCycler 2.0 instrumentet aktiveres venligst i menubaren optionen New og derefter vælges LightCycler Experiment. Derefter kan der oprettes en temperaturprofil til detektion af DNA fra medlemmerne af M. tuberculosis- og M. avium-kompleksen på Deres LightCycler 2.0 instrument i henhold til de følgende fem programtrin (se Tabel 1). A. Initial aktivering af Hot Start-enzymet B. Touch Down trin C. Amplifikation af DNA D. Smeltekurve E. Køling Bemærk, at der først skal indtastes antallet af de for denne PCR-kørsel forberedte kapillarer (Max. Seek Pos.) (se Fig. 8). Tabel 1: Oprettelse af temperaturprofilen. Program Target [ C] Hold [hh:mm:ss] Ramp Rate [ C/s] Sec Target Step Size [ C] Step Delay [cycles] Acq. Mode Cycles Analysis Mode Aktivering 95 00:00: None 1 None Touch Down Amplifikation af DNA Smeltekurve 95 00:00: None 65 00:00: None 72 00:00: None 95 00:00: None 55 00:00: Single 72 00:00: None 95 00:00: None 45 00:00: None 80 00:00:00 0, Cont. 10 None 40 1 Quantification Melting Curves Køling 40 00:00: None 1 None artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

24 For at indtaste prøvespecifikationerne aktiveres venligst funktionen Samples. Først indtastes i vinduet Capillary View den totale sum af PCRopsætningerne, som er planlagt for PCR-kørslen (Sample Count). Derefter kan der tildeles navne til prøverne under Sample Name. Vælg derefter under Selected Channels fluorescenskanalerne 640 til detektion af den analytiske M. tuberculosis/ M. avium-kompleks-pcr og 705 til påvisning af den Interne Kontrol-PCR. For at definere standarderne og for at tildele de tilsvarende koncentrationer vælges venligst under Analysis Type optionen Absolute Quantification (se 8.3 Kvantificering). Sørg for, at funktionen Enable Controls ikke er aktiveret, fordi dette ellers fører til indskrænkninger i udvalget af analyse-optionerne ved dataanalysen (Fit Points-modus står ellers ikke til rådighed, se 9.2 Analyse af LightCycler 2.0 instrument PCR-dataene). Under Target Name kan til de udvalgte fluorescenskanaler 640 og 705 tildeles målsekvenserne (M. tuberculosis/ M. avium-kompleks hhv. Intern Kontrol), som skal detekteres. Det kan gøres lettere at indtaste feltet Target Name med funktionen Auto Copy Definitionen af Target Name gør oversigten lettere, den er dog ikke tvingende nødvendig for data-analysen. For at oprette en standardkurve ved data-analysen, skal kvantificeringsstandarderne defineres med de tilsvarende koncentrationer. For dette vælges Standard under Sample Type og de tilsvarende koncentrationer indtastes under Concentration. Den programmerede temperaturprofil kan gemmes på computerens harddisk, for at anvende den til efterfølgende løb. Hertil aktiveres under menuen File funktionen Save As... I vinduet, som derefter åbner sig, vælges under Templates and Macros fortegnelsen Run Templates og dér gemmes dataene under et egnet navn. For at starte PCR-kørslen, skiftes til feltet Run og aktiveres funktionen Start Run (se Fig. 8). Efter angivelsen af mål-stedet for at gemme dataene, startes PCR-programmet. 24 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

25 Fig. 8: Start af PCR-kørslen: artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

26 9. Analyse 9.1 Analyse af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrument PCRdataene For at analysere PCR-dataene, som blev indhentet med LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet, anbefaler vi anvendelsen af LightCycler Software Version 3.5. Ved multifarve-analyser optræder interferenser mellem fluorescens-kanalerne. Softwaren til LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet indeholder en fil med betegnelsen Color Compensation File, som kompenserer for disse interferenser. Åbn denne fil før, under eller lige efter PCR-kørslen ved aktivering af Choose CCC File eller Select CC Data. Hvis der ikke er installeret en Color Compensation File, udarbejdes den ifølge anvisningerne i LightCycler Operator s Manual. Efter aktiveringen af Color Compensation File fremkommer separate signaler i fluorescenskanalerne F1, F2 og F3. Til analysen af PCR-resultaterne, der udvindes med artus Mycobac. diff. LC PCR Kit, vælges visningsfunktionen F2/Back-F1 til den analytiske M. tuberculosis/ M. avium-kompleks-pcr, hhv. F3/Back-F1 for PCR en af den Interne Kontrol. For analysen af kvantitative kørsler er det yderst vigtigt at følge afsnittet 8.3 Kvantificering samt Technical Note for quantitation on the LightCycler 1.1/1.2/1.5 or LightCycler 2.0 instrument på Følgende resultater er mulige: 1. I fluorescens-kanalen F2/Back-F1 detekteres et signal. Analysens resultat er positivt: Prøven indeholder DNA af en eller flere medlemmer af M. tuberculosis-kompleksen og/eller M. aviumkompleksen. I dette tilfælde er detektionen af et signal i kanalen F3/Back-F1 uvæsentlig, da høje udgangskoncentrationer af DNA fra mykobakterier (positivt signal i kanalen F2/Back- F1) kan føre til et reduceret og tilmed helt udeblivende fluorescens-signal af den Interne Kontrol i kanalen F3/Back-F1 (konkurrence). 26 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

27 En differentiering af M. tuberculosis-kompleksen, af M. avium-subspecies og af M. intracellulare kan gennemføres ved hjælp af smeltepunktet (kanal F2/Back- F1, program Melting Curve). Et smeltepunkt på 60 C tyder på medlemmer af M. tuberculosis-kompleksen, et smeltepunkt på 63,5 C tyder på M. avium og et smeltepunkt på 55 C tyder på M. intracellulare. Afhængigt af forskelle ved instrumenterne kan der opstå afvigelser af 1 2 C, som så ligeledes forekommer hos alle tre smeltepunkter. Forskellige ekstraktionsbetingelser og derud resulterende bufferkonditioner kan føre til at smeltepunktet for en prøve afviger svagt fra den for den vedlagte kontrol. Hvis afvigelsen af smeltepunktet for en prøve til den vedlagte kontrol er større end ± 1 C bør PCR en gentages. For nogle mykobakterie-species kan der iagtages andre end de her angivne temperaturer for smeltepunkterne (se 10. Fejlkilder). 2. I fluorescens-kanalen F2/Back-F1 detekteres der ikke noget signal, men kun i kanalen F3/Back-F1 (signal for Intern Kontrol). I prøven kan der ikke påvises DNA fra medlemmer af M. tuberculosiseller af M. avium-kompleksen. Den kan således betragtes som negativ. Ved negativ M. tuberculosis/ M. avium-kompleks-pcr udelukker det detekterede Intern Kontrol-signal muligheden for en PCR-inhibition. 3. Hverken i kanalen F2/Back-F1 eller i kanalen F3/Back-F1 detekteres der et signal. Et diagnostisk udsagn er ikke muligt. Information om fejlkilder og afhjælpning er angivet under 10. Fejlkilder. Eksempler på positive og negative PCR-reaktioner er angivet i Fig. 9 og Fig. 10. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

28 Fig. 9: Detektion af Kvantificeringsstandarder (M tuberculosis LC QS 1-4) og positiv-kontrollerne (M. avium LC Control, M. intracellulare LC Control) i fluorescens-kanalen F2/Back- F1 af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet. NTC: non-template control (negativkontrol). Fig. 10: Detektion af den Interne Kontrol (IC) i fluorescens-kanalen F3/Back-F1 af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet ved samtidig amplifikation af Kvantificeringsstandarder (M. tuberculosis LC QS 1-4) og af positivkontrollerne (M. avium LC Control, M. intracellulare LC Control). NTC: non-template control (negativkontrol). 28 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

29 Fig. 11: Differentiering mellem M. tuberculosis- og M. avium-kompleks i fluorescenskanalen F2/Back-F1 af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet. 9.2 Analyse af LightCycler 2.0 instrument PCR-dataene For at analysere PCR-dataene, som blev indhentet med LightCycler 2.0 instrumentet, anbefaler vi anvendelsen af LightCycler Software Version 4.0. Bemærk venligst også anvisningerne i LightCycler 2.0 instrument Operator's Manual Version 4.0. Følg ved analysen af PCR-dataene venligst de følgende arbejdstrin (se Fig. 12) Aktiver i menubaren funktionen Analysis og vælg funktionen Absolute Quantification, som skal bruges til principielt alle analyser af amplifikationsdata, der blev genereret med artus LC PCR Kit. LightCycler software version 4.0 indeholder en fil, som kaldes Color Compensation File, der kompenserer signal-interferencer mellem fluorescenskanalerne. Denne fil skal åbnes under eller lige efter PCRkørslen ved at aktivere funktionen Color Comp (On/Off) og lige efter Select Color Compensation (se Fig. 12). Hvis der ikke er installeret en artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

30 Color Compensation File, så oprettes filen ved hjælp af vejledningen i LightCycler Operator s Manual. Efter aktivering af Color Compensation File fremkommer separate signaler i de enkelte fluorescenskanaler. For at analysere PCR-resultaterne, som blev indhentet med artus Mycobac. diff. LC PCR Kit, vælges venligst visningsfunktionen 640/Back 530 for den analytiske M. tuberculosis/ M. avium-kompleks-pcr hhv. 705/Back 530 for PCR en af den Interne Kontrol. Fig. 12: Aktivering af Color Compensation File og valg af fluorimeterkanalen. For analysen af kvantitative kørsler bemærk venligst afsnittet 8.3 Kvantificering og Technical Note for quantitation on the LightCycler 1.1/1.2/1.5 or LightCycler 2.0 instrument på Efter afslutningen af indstillingerne for analyse-optionerne kan der opstå de følgende resultater: 30 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

31 4. I fluorescens-kanalen 640/Back 530 detekteres et signal. Resultatet af analysen er positivt: Prøven indeholder DNA fra en eller flere medlemmer af M. tuberculosis-kompleksen og/eller M. aviumkompleksen. I dette tilfælde er detektionen af et signal i kanalen 705/Back 530 uvæsentlig, da høje udgangskoncentrationer af DNA fra mykobakterier (positivt signal i kanalen 640/Back 530) kan føre til et reduceret og tilmed helt udeblivende fluorescens-signal af den Interne Kontrol i kanalen 705/Back 530 (konkurrence). En differentiering af M. tuberculosis-kompleksen, af M. avium-subspecies og af M. intracellulare kan gennemføres ved hjælp af smeltepunktet (kanal 640/Back 530, program Melting Curve). Et smeltepunkt på 60 C tyder på medlemmer af M. tuberculosis-kompleksen, et smeltepunkt på 63,5 C tyder på M. avium og et smeltepunkt på 55 C tyder på M. intracellulare. Afhængigt af forskelle ved instrumenterne kan der opstå afvigelser af 1 2 C, som så ligeledes forekommer hos alle tre smeltepunkter. Forskellige ekstraktionsbetingelser og derud resulterende bufferkonditioner kan føre til at smeltepunktet for en prøve afviger svagt fra den for den vedlagte kontrol. Hvis afvigelsen af smeltepunktet for en prøve til den vedlagte kontrol er større end ± 1 C bør PCR en gentages. For nogle mykobakterie-species kan der iagtages andre end de her angivne temperaturer for smeltepunkterne (se 10. Fejlkilder). 5. I fluorescens-kanalen 640/Back 530 detekteres ikke noget signal, men kun i kanalen 705/Back 530 (signal af den Interne Kontrol). I prøven kan der ikke påvises DNA fra medlemmer af M. tuberculosiseller af M. avium-kompleksen. Den kan således betragtes som negativ. Ved negativ M. tuberculosis/ M. avium-kompleks-pcr udelukker det detekterede Intern Kontrol-signal muligheden for en PCR-inhibition. 6. Hverken i kanalen 640/Back 530 eller i kanalen 705/Back 530 detekteres der et signal. Et diagnostisk udsagn er ikke muligt. Information om fejlkilder og afhjælpning er angivet under 10. Fejlkilder. Eksempler på positive og negative PCR-reaktioner er angivet i Fig. 13-Fig. 15. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

32 Fig. 13: Detektion af Kvantificeringsstandarder (M. tuberculosis LC QS 1-4) i fluorescens-kanalen 640/Back 530 af LightCycler 2.0 instrumentet. NTC: non-template control (Negativkontrol). Fig. 14: Detektion af den Interne Kontrol (IC) i fluorescens-kanalen 705/Back 530 af LightCycler 2.0 instrumentet ved samtidig amplifikation af Kvantificeringsstandarderne (M. tuberculosis LC QS 1-4). NTC: non-template control (Negativkontrol). 32 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

33 Fig. 15: Differentiering mellem M. tuberculosis- og M. avium-kompleks i fluorescenskanalen 640/Back 530 af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

34 10. Fejlkilder Intet signal ved kvantificeringsstandarderne (M. tuberculosis LC QS 1-4) og positivkontrollerne (M. avium LC Control, M intracellulare LC Control) i fluorescenskanalen F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530: Valget af fluroescenskanalen ved PCR-data-analysen svarer ikke til angivelserne i protokollen. Vælg for data-analysen fluorescenskanalen F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530 for den analytiske M. tuberculosis/ M. avium-kompleks- PCR og fluorescenskanalen F3/Back-F1 hhv. 705/Back 530 for PCR en af den Interne Kontrol. Fejl i progammeringen af temperaturprofilen for LightCycler 1.1/1.2/1.5 hhv. LightCycler 2.0 instrumentet. Sammenlign temperaturprofilen med angivelserne i protokollen (se 8.5 Programmering af LightCycler instrumenterne). Fejl i sammensætningen af PCR-reaktionen. Kontrollér arbejdstrinnene ved hjælp af pipetteringsskemaet (se 8.4 Forberedelse af PCR) og gentag i givent tilfælde PCR en. Betingelserne for opbevaring af en eller flere af kittets komponenter svarede ikke til de i 2. Opbevaring angivne forskrifter eller holdbarhedsdatoen for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit blev overtrådt. Kontrollér venligst både betingelserne for opbevaring og holdbarhedsdatoen (se på kit-etiketten) af reagenserne og anvend i givent tilfælde et nyt kit. Svagt eller fraværende signal fra den Interne Kontrol i fluorescenskanalen F3/Back-F1 hhv. 705/Back 530 og samtidig fravær af et signal i kanalen F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530 for den specifikke M. tuberculosis-/ M. avium-kompleks-pcr: PCR-betingelserne svarer ikke til protokollen. Kontrollér betingelserne (se foroven) og gentag i givent tilfælde PCR en med korrigerede indstillinger. PCR en er blevet inhiberet. 34 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

35 Sørg for, at De anvender en af os anbefalet oprensningsmetode (se 8.1 DNA-isolering) og hold Dem nøje til producentens anvisninger. Kontrollér, at der ved DNA-oprensningen, før gennemførelsen af elueringen, blev gennemført det anbefalede centrifugeringstrin til den fuldstændige fjernelse af ethanol-rester (se 8.1 DNA-isolering). Der foreligger tab af DNA forårsaget af oprensningen. Hvis den Interne Kontrol blev tilsat oprensningen, kan fravær af signalet fra den Interne Kontrol betyde, at der foreligger tab af DNA forårsaget af oprensningen. Sørg for, at De anvender en af os anbefalet oprensningsmetode (se 8.1 DNA-isolering) og hold Dem nøje til producentens anvisninger. Betingelserne for opbevaring af en eller flere af kittets komponenter svarer ikke til de i 2. Opbevaring angivne forskrifter eller holdbarhedsdatoen af artus Mycobac. diff. LC PCR Kit blev overtrådt. Kontrollér venligst både betingelserne for opbevaring og holdbarhedsdatoen (se på kit-etiketten) af reagenserne og anvend i givent tilfælde et nyt kit. Et signal ved negativkontrollerne i fluorescenskanalen F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530 af den analytiske PCR: Der foreligger en kontamination ved forberedelserne af PCR en. Gentag PCR en med ubrugte reagenser i replikater. Luk, hvis muligt, hvert af de enkelte PCR-beholdere direkte efter tilsætningen af den prøve der skal undersøges. Pipettér principielt positiv-kontrollerne sidst. Sørg for at arbejdsbordene og apparaterne regelmæssigt dekontamineres. Der foreligger en kontamination forårsaget af oprensningen. Gentag oprensningen og PCR en for de prøver der skal undersøges under anvendelse af ubrugte reagenser. Sørg for at arbejdsbordene og apparaterne regelmæssigt dekontamineres. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

36 Smeltekurveanalysen i fluorescenskanalen F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530 tillader ingen entydig tildeling til en af de tre detekterbare grupper af mykobakterier. Prøven indeholder DNA fra M. intracellulare af serotypen 7 eller 18. I dette tilfælde ligger smeltepunktet ved ca. 52 C. Prøven indeholder DNA fra M. marinum og/eller M. ulcerans. I dette tilfælde ligger smeltepunktet ved ca. 53 C. Prøven indeholder DNA fra M. haemophilum. I dette tilfælde ligger smeltepunktet ved ca. 62 C. Prøven indeholder DNA af en mykobakterie-species, hos hvilken det ikke drejer sig om M. marinum, M. ulcerans eller et medlem af M. avium- hhv. M. tuberculosis-kompleksen. Det er ikke muligt at tildele den en defineret mykobakteriespecies. Hvis der skulle opstå yderligere spørgsmål eller problemer, kontakt venligst vores tekniske service. 11. Specifikationer 11.1 Analytisk sensitivitet Til bestemmelsen af den analytiske sensitivitet for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit under anvendelse af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet blev der udarbejdet en standard-fortyndingsrække af 50 til nominelt 0,05 M. tuberculosis-kopiækvivalenter * /µl hhv. af 50 til nominelt 0,39 M. aviumog M. intracellulare-kopiækvivalenter/µl. Denne blev derefter analyseret med artus Mycobac. diff LC PCR Kit. Undersøgelsen blev gennemført på tre forskellige dage med otte replikater. Hvert resultat blev udarbejdet ved hjælp af en probit-analyse. Dens grafiske analyse er vist i Fig. 16-Fig. 18. * Ved den anvendte standard drejer det sig om et klonet PCR-produkt, hvis koncentration blev bestemt spektral- og fluorecens-fotometrisk. 36 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

37 detektionsgrænse (p = 0,05) M. tuberculosis-kompleks 1,5 kopier/µl M. avium-subspecies 3,8 kopier/µl M. intracellulare 2,8 kopier/µl Det betyder, at 1,5 kopier/µl (M. tuberculosis-kompleks), 3,8 kopier/µl (M. avium-subspecies) hhv. 2,8 kopier/µl (M. intracellulare) detekteres med 95 % sandsynlighed. Probit-analyse: Mycobacterium tuberculosis (LightCycler 1.1/1.2/1.5) Fig. 16: Analytisk sensitivitet for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit (M. tuberculosis) under anvendelse af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

38 Probit-analyse: Mycobacterium avium (LightCycler 1.1/1.2/1.5) Fig. 17: Analytisk sensitivitet for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit (M. avium) under anvendelse af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet. Probit-analyse: Mycobacterium intracellulare (LightCycler 1.1/1.2/1.5) Fig. 18: Analytisk sensitivitet for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit (M. intracellulare) under anvendelse af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet. 38 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

39 11.2 Specificitet Specificiteten for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit sikres først og fremmest igennem udvalget af primere og prober samt ved valget af stringente reaktionsbetingelser. Primerne og proberne blev kontrolleret for eventuelle homologier til alle i genbanker publicerede sekvenser ved hjælp af en sekvenssammenlignings-analyse. Detekterbarheden for alle medlemmer af M. tuberculosis- og M. avium-kompleksen kontrolleres herved. Specificitetens validering blev derudover foretaget på 90 forskellige M. tuberculosis- og M. avium-kompleks negative prøver (30 spyt-, 30 BAL- og 30 bronkialsekretprøver), som ikke genererede et signal med de i M. tuberculosis LC Master integrerede M. tuberculosis/ M. avium-kompleks specifikke primere og prober. Til bestemmelsen af specificiteten for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit blev den i Tabel 2 angivne kontrolgruppe undersøgt for krydsreaktivitet. Ingen af de testede smitstoffer var reaktive. artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

40 Tabel 2 (del 1): Specificitetstest af kittet med potentielle krydsreaktive smitstoffer. Kontrolgruppe M. tuberculosis-/ M. avium-kompleks (F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530) Intern Kontrol (F3/Back-F1 hhv. 705/Back 530) Actinomyces israelii - + Aeromonas hydrophila - + Bordetella pertussis - + Candida albicans - + Chlamydia trachomatis - + Chlamydia pneumoniae - + Citrobacter freundii - + Corynebacterium diphtheriae - + Corynebacterium jeikeium - + Cryptococcus neoformans - + Eikenella corrodens - + Enterobacter aerogenes - + Enterobacter cloacae - + Enterococcus faecalis - + Enterococcus faecium - + Escherichia coli - + Fusobacterium nucleatum ssp. polymorphum Haemophilus influenzae - + Haemophilus parainfluenzae - + Klebsiella pneumoniae - + Lactobacillus acidophilus - + Neisseria gonorrhoeae - + Neisseria meningitidis - + Nocardia asteroides - + Nocardia brasiliensis - + Nocardia farcinia - + Nocardia otitidiscaviarum - + Peptostreptococcus productus - + Porphyromonas gingivalis - + Prevotella denticola artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015

41 Tabel 2 (del II): Specificitetstest af kittet med potentielle krydsreaktive smitstoffer. Kontrolgruppe M. tuberculosis-/ M. avium-kompleks (F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530) Intern Kontrol (F3/Back-F1 hhv. 705/Back 530) Propionibacterium acnes - + Pseudomonas aeruginosa - + Salmonella enteritidis - + Salmonella typhi - + Staphylococcus aureus - + Staphylococcus epidermidis - + Streptococcus agalactiae - + Streptococcus pyogenes - + Streptococcus mutans - + Streptococcus pneumoniae - + Streptomyces venezuelae - + Veillonella parvula - + Xanthomonas maltophilia - + Hvis en prøve indeholder større mængder DNA fra en mykobakterie-species, som ikke tilhører M. tuberculosis/ M. avium-kompleksen, så kan det komme til udeblivelse af den Interne Kontrol (se Tabel 3) Derudover kan der muligvis opstå et amplifikationssignal i kanalen F2/Back-F1 og/eller en smeltekurve. Dog tillader smeltepunktet for alle testede mykobakterier entydigt at udelukke et tilhørsforhold til M. tuberculosis/ M. avium-kompleksen (se Tabel 3). artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/

42 Tabel 3: Specificitetstest af kittet med potentielle krydsreaktive mykobakterier. Species M. tuberculosis-/ M. aviumkompleks (F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530) Intern Kontrol (F3/Back-F1 hhv. 705/Back 530) Smeltepunkt (F2/Back-F1 hhv. 640/Back 530) Mycobacterium celatum ,5 C Mycobacterium chelonae Mycobacterium fortuitum Mycobacterium gordonae Mycobacterium haemophilum ,0 C Mycobacterium kansasii ,0 C Mycobacterium lentiflavum ,0 C Mycobacterium malmoense ,0 C Mycobacterium marinum ,5 C Mycobacterium scrofulaceum Mycobacterium szulgai ,5 C Mycobacterium ulcerans ,5 C Mycobacterium xenopi Præcision Præcisionsdata for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit blev bergenet under anvendelse af LightCycler 1.1/1.2/1.5 instrumentet og tillader en bestemmelse af totalvariansen (samlet spredning) af testsystemet. Denne totalvarians består af Intra-assay variationen (spredning af prøver med samme koncentration inden for en forsøgsopsætning), af Inter-assay variationen (spredning der forekommer pga. forskellige personer inden for et laboratorium, der udfører analysen på forskellige apparater af samme type) og af Inter-lot variationen (spredning ved benyttelse af forskellige lots). Via dette bliver såvel standardafvigelsen, variansen og variationskoefficienten for både den smitstof-specifikke- og Intern Kontrol-PCR en beregnet. Disse præcisionsdata blev bestemt for artus Mycobac. diff. LC PCR Kit på baggrund af Kvantificeringsstandarden med den laveste koncentration (QS 4; 50 kopier/µl). Undersøgelserne blev udført med otte replikater. Resultaterne af præcisionsdataene blev beregnet på grundlag af amplifikationskurvens Ct- 42 artus Mycobac. diff. LC PCR Kit 03/2015