Studieplan Bioanalyse Semester 2

Transkript

1 OMRÅDET FOR SUNDHEDSUDDANNELSER Studieplan Bioanalyse Semester 2 Bioanalytikeruddannelsen i Odense Forår 2017

2 Semester 2 Indhold 1. Fagets fokus og emner Lektionsplan Litteraturliste Fagets læringsudbytter Overordnede læringsudbytter Detaljerede læringsudbytter Studieaktivitetsmodellen Feedback... 15

3 Semester Fagets fokus og emner Fokus for faget bioanalyse er, at den studerende opnår teoretisk viden og praktiske færdigheder inden for eksemplarisk valgte analyser, i relation til semestrets andre fag. Bioanalyse er inddelt i følgende hovedemner: Enzymkemiske analyser Histokemi Fotometri Mikrobiologiske analyser Immunkemiske analyser Punktpraktik

4 Semester Lektionsplan Uge Dag Dato 8 Fredag 24/2 9 Tirsdag 28/2 Onsdag 1/3 10 Mandag 6/3 Lektion Emne Indhold Aktivitet Litteratur 6-7 Fotometri 1,2 Histokemi Repetition af Fotometri fra Semester 1 PAS-farvning 1-4 Hold 1 K1: Øvelse 6,7 K2: 3,4 Hold 2 K2: 6-9 K1: Øvelse 1,2 Fotometri Repetition af absorptionsfotometri fra semester 1 Kalibrering og koncentrationsbestemmelse K2: Repetitionsopgave er lagt på Fronter Fra semester 1 K1:Undervisning (1) Kap 5 K1: Dialog om opgave GLE + PP Fra semester 1 KGA s (kalibrering) 3,4 Opgaver om koncentrationsbestemmelse K2: Opgaver lægges på Fronter 6,7 Opsamling vedr. koncentrationsbestemmelse K4: Dialog Onsdag 8/3 Apparatur: komponenter og opbygning af absorptionsfotometre 2,3 Interferens: begreber og kilder Korrektion: reagensblind og prøveblind, beregninger Undervisning KGA s (Fotometre) K1: Undervisning og dialog Roche 2007, Serum Indices s KGA s Torsdag 16/3 4 Serum indicier K1: Undervisning og dialog Roche 2007, Serum Indices s ,7 Andre fotometriske metoder: reflektometri, nephelometri, turbidemetri, chemiluminiscens og Fluorimetri Fredag 1 Histokemi Opsamling på øvelse K4: K1: Undervisning og dialog WIN s (reflektometri og sprednings-fotometri) KGA s (Turbidimetri, Fluorimetri og chemiluminiscens

5 Semester Torsdag 23/3 13 Torsdag 30/3 17/3 2,3 Fotometri Automatiseret absorptionsfotometri: Fredag 31/3 14 Tirsdag 4/4 Onsdag 5/4 Torsdag 6/4 Pentra 400: opbygning, funktion, analyseopsætning og beregninger 1-4 Enzymkemiske analyser / Hold 1 K1: Øvelse 6-9 Fotometri K2: 1-4 Enzymkemiske analyser / Hold 2 K2: 6-9 Fotometri K1: Øvelse 1 Mikrobiologiske analyser Intro til øvelse K1: 2-4,6 K1: Øvelse 7,8 K2: 1 Intro til øvelse K1: 2-4,6 K1: Øvelse 7,8 K2: 6 Opsamling på øvelse K4: 7 Intro til øvelse K1: 3,4,6,7 K1: Øvelse 8 K2: Rapportskrivning 1 Intro til øvelse K1: 2-4,6 K1: Øvelse 7,8 K2: Rapportskrivning K1: Undervisnings og dialog Pentra 400 Tekniske specifikationer Pentra 400 Beskrivelse og teknologi (minus s og s ) Ligger på Fronter

6 Semester Fredag 21/4 1-3 Immunkemiske analyser Immunoassay eksemplificeret ved ELISA Direkte og indirekte metode Sandwich ELISA (Capture ELISA) Mikropartikel immunassay Kontrolsystemer og fejlfinding Kliniske eksempler på anvendelse ELISA K1: Undervisning Oplæg og dialog Opgaver (2) Kap. 10 s m (Stop ved Rapids Immunoassays/Afsnittet om Radioimmunoassay læses ikke) + s (Afsnittet om Chemiluminescent Immunoassay) Ligger på Fronter Link: Overview of ELISA (Thermofisher) Følgende læses på hjemmesiden: Comparison of Direct and Indirect ELISA Detection Methods (tabel) Selecting and Coating ELISA Plates (Læs fra: Plate coating is achieved ) Antibodies and Probes for ELISA Blocking Buffers and Wash Buffers Detection Strategies for ELISA Supplerende litteratur (Læs evt. denne danske tekst om ELISA før de engelske tekster): Link: Immunkemiske metode Læs afsnittet om ELISA (Bemærk at det 2. antistof i figuren over den indirekte ELISA vender forkert) 17 Tirsdag 25/4 8 K1: Undervisning/øvelse Vi mødes i B.138 Øvelsesvejledning: Påvisningen af Chlamydia pneumoniae IgG antistof

7 Semester 2 7 Onsdag 26/4 1-4 Hold 1 K1: Øvelse Øvelsesvejledning: Påvisningen af Chlamydia pneumoniae IgG antistof 6,7 K2: Studieopgaver Litteratur anvendt om ELISA Se arbejdsark i Fronter 3,4 Hold 2 K2: Studieopgaver Litteratur anvendt om ELISA Torsdag 27/4 18 Mandag 1/5 Onsdag 3/5 Torsdag 4/5 Se arbejdsark i Fronter 6-9 K1: Øvelse Øvelsesvejledning: Påvisningen af Chlamydia pneumoniae IgG antistof 1 K1: Opsamling 6,7 Punktpraktik K1: 1-8 K1: 3-7 K2: 3. Litteraturliste 1. Jelsbak V, Hallager K. Farvning af celler og væv, Noter, modul udg. VIA University College Bioanalytikeruddannelsen; Stevens CD. Clinical immunology and serology : a laboratory perspective. 3. udg. Philadelphia: F.A. Davis; xvi, 454 s., illustreret, tavler.

8 Semester Fagets læringsudbytter 4.1 Overordnede læringsudbytter Viden Forklare princippet ved enzymatisk bestemmelse af substratkoncentration Forklare det histokemiske princip i en PAS-farvning Forklare princippet i absorptionsfotometri Forklare opbygning og funktion af udvalgt fotometrisk udstyr Forklare anvendelsen af flerpunkts-kalibreringer til koncentrationsbestemmelse Forklare begrebet interferens samt metoder til korrektion for dette Beskrive principperne i reflektometri, nephelometri, turbidimetri, chemiluminiscens og fluorimetri Beskrive relevante sikkerheds- og aseptiske arbejdsprocedurer Forklare analyseprincippet bag udvalgte immunkemiske analyser, herunder kvalitetssikringen og den kliniske anvendelse. Beskrive processen og kvalitetssikringen i relation til patient-/borgerforløbet for en udvalgt analyse/undersøgelse samt formålet med denne Færdigheder udføre en enzymatisk bestemmelse af substratkoncentration ved manuel og automatiseret metode Udføre en PAS-farvning Anvende flerpunkts-kalibrering til koncentrationsbestemmelse

9 Semester 2 9 Anvende metoder til korrektion for interferens Anvende automatiseret udstyr til absorptionsfotometrisk analyse Håndtere mirkobiologisk materiale Udføre dyrkning og resistensbestemmelse på udvalgte bakterier Vurdere resultater ved dyrkning og resistensbestemmelse på udvalgte bakterier Formidle viden om dyrkning og resistensbestemmelse på udvalgte bakterier Varetage udførslen og kvalitetssikringen af udvalgte manuelle immunkemiske analyser. Identificere og kategorisere udvalgte immunkemiske analyser i et automatiseret medicinsk laboratorieudstyr. 4.2 Detaljerede læringsudbytter Enzymkemiske analyser Viden Forklare princippet ved enzymatisk bestemmelse af substratkoncentration Færdigheder udføre en enzymatisk bestemmelse af substratkoncentration ved manuel og automatiseret metode Histokemi Viden

10 Semester 2 10 Forklare de analytiske procedurer i forbindelse med histokemisk farvning Klassificere de forskellige farvestoffer Beskrive de forskellige farvemekanismer Forklare det histokemiske princip i en PAS-farvning Beskrive de postanalytiske procedurer i forbindelse med histokemisk farvning Færdigheder Udføre en PAS-farvning Fotometri Viden Forklare opbygning og funktion af absorptionsfotometre Forklare anvendelsen af flerpunkts-kalibreringer til koncentrationsbestemmelse Forklare begreberne reagens- og prøveblind Forklare begrebet interferens Angive kilder til interferens og metoder til korrektion for disse Angive principperne i reflektometri, nephelometri, turbidimetri, chemiluminiscens og fluorimetri

11 Semester 2 11 Beskrive funktionen af automatiseret udstyr til absorptionsfotometriske analyser Færdigheder Anvende flerpunkts-kalibreringskurver til koncentrationsbestemmelse Anvende reagens- og prøveblind ved fotometrisk analyse Identificere kilder til interferens og anvende metoder til korrektion for disse Anvende automatiseret udstyr til absorptionsfotometrisk analyse Mikrobiologiske analyser Viden Beskrive relevante sikkerheds- og aseptiske arbejdsprocedurer Færdigheder Udføre dyrkning og resistensbestemmelse på udvalgte bakterier, herunder vurdere: o o o o Identifikation på baggrund af morfologi Bevægelighed Farvning Biokemiske reaktioner

12 Semester 2 12 o o Metabolisme Reaktionsmønster Vurdere resultater ved dyrkning og resistensbestemmelse på udvalgte bakterier Formidle viden om dyrkning og resistensbestemmelse på udvalgte bakterier Immunkemiske analyser Viden Forklare analyseprincippet bag og udførslen af direkte, indirekte og direkte-sandwich immunanalyser (immunoassays) eksemplificeret ved ELISA-teknik. Kan forklare kontrolsystemer og fejlkilder ved ELISA-teknikken, der kan medføre falsk positive og falsk negative resultater. Reflektere over ELISA-teknikkernes analytiske specificitet og sensitivitet ved påvisning af hhv. antigen og antistof. Forklare udvalgte ELISA-teknikkers kliniske anvendelse inden for screening og diagnostik. Kan overføre viden om ELISA-teknikken til mikropartikel immunanalyser. Færdighed Den studerende kan Varetage udførslen af udvalgte manuelle ELISA-teknikker og vurdere kvaliteten af det udførte arbejde. Identificere og kategorisere ELISA-tekniker i et automatiseret medicinsk laboratorieudstyr. Punktpraktik

13 Semester 2 13 Følger

14 Semester Studieaktivitetsmodellen Undervisning og vejl. Simulationstræning Feedback Introduktioner mv. Semesterprøver og lign. Studieopgaver Journal-/rapportskrivning Udarbejdelse af oplæg e-læringsopbjekter Evalueringer Kategori 1 Deltagelse af undervisere og studerende initieret af underviser 51 timer Kategori 2 Deltagelse af studerende Initieret af underviser 39 timer Videndeling Opsamling på gr. arb. Vejledning Holdmøde Workshop Kategori 4 Deltagelse af undervisere og studerende initieret af studerende 3 timer Kategori 3 Deltagelse af studerende initieret af studerende 33 timer Egen forberedelse Selvstændig aktivitet Studieteam arb. Litteratursøgning Studiecafé

15 Semester Feedback Feedback fra underviser og medstuderende opnås gennem aktiv deltagelse i dialogbaseret undervisning og vidensdeling. Inden for flere af emnerne skal der udarbejdes skriftlige produkter. Der vil blive givet skriftlig eller mundtlig feedback til disse.