Test dit eget DNA med PCR



Relaterede dokumenter
Test dit eget DNA med PCR

Test dit eget DNA med PCR

Test dit eget DNA med PCR

Test dit eget DNA med PCR

Velkommen. Test dit eget DNA med PCR. Undervisningsdag på DTU Systembiologi. Undervisere:

Velkommen. Test dit eget DNA med PCR. Undervisningsdag på DTU Systembiologi. Undervisere: Sebastian, Louise og Ana

GAPDH PCR modul Manual

Protokol for genetisk bestemmelse af ABO blodtyper

KRIMINALDETEKTIVEN GERNINGSSTEDETS GÅDE PCR

DNA origami øvelse DNA origami øvelse

DNA origami øvelse DNA origami øvelse

DNA origami øvelse DNA origami øvelse

DNA origami øvelse. Introduktion. DNA origami øvelse 3 timer 2018

PCR (Polymerase Chain Reaction): Opkopiering af DNA

Biotechnology Explorer. Kromosom 16 PV92 PCR Kit

Gerningsstedets gåde Den usynlige sandhed - DNA PCR Basics Kit. Katalog nr EDU

Trin 1: Oprensning af genomisk DNA (DeoxyriboNucleicAcid)

Analyse af proteiner Øvelsesvejledning

Biotechnology Explorer

På jagt efter min far. Edvotec S-49.

Biotechnology Explorer GMO analyse Kit

Regnskovens hemmeligheder

Protokol for genetisk bestemmelse af ABO blodtyper

OPTIMERING AF PCR MHP. DETEKTION AF SNP ER I CERS6.

Biotechnology Explorer. Protein Fingerprinting

Biotechnology Explorer

Ekstraktion af proteiner fra kød, æg og mælkeprodukter

DNA-smykke Simpel ekstraktion af DNA fra kindceller fra mennesket, som er velegnet til at bruge i et halssmykke

FORSØG ØL verdens første svar på anvendt

En forsker har lavet et cdna insert vha PCR og har anvendt det følgende primer sæt, som producerer hele den åbne læseramme af cdna et:

Appendix 1: Udregning af mængde cellesuspention til udsåning. Faktor mellem total antal celler og antal celler der ønskes udsås:

Mælkesyrebakterier og holdbarhed

Restriktionsenzymer findes Genkendelsessekvens

Laboratorieprotokol for manuel isolering af DNA fra 0,5 ml prøve

Elektroforese. Navne: Rami Kassim Kaddoura Roman Averin Safa Sarac Magnus Høegh Jensen Frederik Gaarde Lindskov

Kapitel 1 Genteknologi (1/6)

C V C. Vejledning i brug af Biofortuna SSPGo TM HLA No Template Control Kit BF Revision 2. Juli 2014

Faktor V Leiden mutation

Konkurrence mellem to bakteriearter

Formål At analysere for myosin i muskelvæv fra fisk ved brug af western blotting

Mælkesyrebakterier og holdbarhed

Ligerings- og transformationsmodul inklusiv plasmidoprensning og restriktionsanalyse

Elevvejledning pglo transformation

Plasmidoprensning med kogemetode Oprensning af plasmid DNA med kogemetode for brug til transformation og restriktionsanalyse

Biotechnology Explorer. Regnskovens hemmelighed

Biotechnology Explorer

STUDERENDES ØVELSESARK TIL EKSPERIMENT A: NATURLIGE NANOMATERIALER

Deltagermateriale OGM. PCR-teknikker 1

Energi Til Livet Nu -Sundhed i en travl hverdag. Kombucha guide

Kromosom 16 PV92 PCR Kit

Biotechnology Explorer ELISA Immuno Explorer Kit. Instruktionsmanual

Isolering af DNA fra løg

ELISA Immuno Explorer TM Kit

ESBJERG KOMMUNE FORSØG MED IS. Book Kerstin. KEBOO. [Skriv tekst]

Børsteormene Marenzelleria

Materialeliste: Ready-to-loadTM DNA prøver til elektroforese. Medfølgende reagenser og tilbehør. Egne materialer

Udvikling af ny medicin

Puffere. Øvelsens pædagogiske rammer. Sammenhæng. Formål. Arbejdsform: Evaluering

INGENIØRENS ARBEJDSMETODE: ØV DIG I METODEN

Uge 39 med Helsingør Kommune og Forsyning Helsingør.

digital Tema Vands forvandling Noter til læreren: Forsøg til slowmotion-film og elevfremlæggelser - samt lidt teori TEMA: BESKYT DIN HJERNE

Proteinelektroforese af GFP Suppleringskit til pglo

AdnaTest ProstateCancerSelect

Øvelse med tarmkræftceller i kultur.

Undersøgelser af fiskeproteiner. protein-fingerprinting og immunoblotting 1. Proteomik kit I Proteinelektroforese

AFKØLING Forsøgskompendium

Kemiøvelse 2 1. Puffere

Fremstilling af ferrofluids

[BESØGSSERVICE INSTITUT FOR MOLEKYLÆRBIOLOGI OG GENETIK, AU]

KOSMOS. 7.1 Spaltning af sukker. Materialer MADENS KEMI KEMISKE STOFFER I MADEN DISACCHARIDER

Regnskovens hemmelighed

QIAsymphony SP-protokolark

August 2016 Outbreak Copyright: Lise Junker Nielsen & Allan Haurballe. Foto og illustrationer: Colourbox Kontakt:

Som substrat i forsøgene anvender vi para nitrophenylfosfat, der vha. enzymet omdannes til paranitrofenol

Gæringsprocessen ved fremstillingen af alkohol tager udgangspunkt i glukose molekylet (C

Brugsanvisning for SURVEYOR Scan NRAS Kit Exons 2, 3 & 4 CE IVD

Green Fluorescent Protein (GFP) Oprensning af GFP

HLA SSP Kits. Klar til brug Sequence Specific Primers (SSP) reagens kit for DNA baseret HLA typning [IVD] For In Vitro Diagnostisk Brug [DK]

Vejledning i brug af Biofortuna SSPGo TM HLA Typing Kits CE revision 5, Januar 2014

Opskrift på Smart gele (6-10 klumper)

BIOZYMER ØVELSE 2 OPRENSNING AF PROTEINER

NOD2 ekspression i tarmepitelceller

Brugsanvisning. PCR-amplifikation og sekventering af HLA-klasse I- og II-loci. Versionsnr.: 13.0 Udfærdigelsesdato: Juli 2013

Banan DNA 1/6. Formål: Formålet med øvelsen er at give eleverne mulighed for at se DNA strenge med det blotte øje.

Opgave 1: Lav 100% din havregrød

Biologisk rensning Fjern opløst organisk stof fra vand

Androstenon-indol-skatol-protokol.

Dette er en kladde til et genoptryk af Eksperimentel Genteknologi fra Ideer, rettelser og forslag modtages gerne. Kh Claudia.

ScanGel ReverScan A1, B x 5 ml ReverScan A1, A2, B, O x 5 ml

Brugsanvisning for SURVEYOR Scan KRAS Kit Exon 2 CE IVD

datp, dctp, dgtp, dttp, [α 32 P]-dCTP urinstofholdig polyacrylamid gel røntgen film

De tre tilstandsformer

VÆSKERS VISKOSITET: DESIGN DIN UNDERSØGELSE

Algedråber og fotosyntese

BIOZYMER ØVELSE 3 BEKÆMP DIN β-lactamase - TEST DIN EGEN MEDICIN!

Hjemmelavet ost. Hvis man ikke har prøvet det før, kan det måske være lidt svært at overskue at gå igang med at lave sin egen hjemmelavede ost, så...

SOP for håndtering af standardsæt blod Regionernes Bio- og GenomBank

Øvelser 10. KlasseCenter Vesthimmerland Kaj Mikkelsen

Følgende sprog er inkluderet i denne pakke:

Identifikation af aminosyre

Transkript:

Test dit eget DNA med PCR Navn: Forsøgsvejledning

Formål med forsøget Formålet med dette forsøg er at undersøge jeres arvemateriale (DNA) for et transposon kaldet Alu. Et transposon er en DNA sekvens, der kan hoppe rundt i vores genom. Vi skal i dette forsøg undersøge Alu sekvenser på kromosom 16 i vores genom (det humane genom), om der her er indsat en Alu sekvens på enten et eller begge sites i kromosom 16 hos hver enkelt af jer. Man kan afgøre om der er indsat en Alu sekvens på kromosom 16 ved at amplificere den region Alu sekvensen indsættes i. Her skal I undersøge et bestemt locus kaldet PV92. For at få netop denne specifikke region amplificeret bruges teknikken PCR (Polymerase Chain Reaction). Herefter kan størrelsen af det amplificerede DNA visualiseres med gelelektroforese. Alu sekvenser har en størrelse på 300 basepar. Det vides desuden at locus PV92 har en størrelse på 415 basepar uden Alu sekvensen. Det betyder, at hvis man har indsat en Alu sekvens på begge sine kromosom 16 (man er homozygot for den genotype) vil der vise sig ét kraftigt bånd ved en afstand svarende til en størrelse på 300 + 415 = 715 bp. Er man derimod heterozygot (har kun en sekvens indsat på det ene kromosom, men ikke det andet) vil der fremkomme to bånd på gelen: et ved 415 bp og et ved 715 bp. Har man til gengæld slet ikke indsat nogen Alu sekvens, vil der vise sig ét bånd svarende til størrelsen 415 bp. Side 2 af 7

Del 1.1 Udtagning af menneskelige celler Papkrus 10 ml 0,9 % NaCl opløsning (isotonisk saltvand) i rør, ét pr. elev 1 x 2 ml Safe Lock eppendorfrør pr. elev 2 x automatpipetter (1000 µl) m. sterile pipettespidser Følgende udføres af alle: 1. 10 ml saltvand tages i munden, og der blandes grundigt rundt i 30 sekunder. 2. Saltvand (+ celler) spyttes ud i et papkrus, og denne svinges rundt for at blande cellerne. 3. Automatpipetten indstilles til 1000 µl (1mL) og der suges dette op og puttes i et Safe Lock eppendorfrør med tal på. Tallet bruges på jeres rør resten af dagen, så husk det. Når alle har afgivet en celleprøve, passer I godt på jeres eppendorfrør med celler og begiver jer op i laboratoriet. Del 1.2 Isolering af DNA 1 x Eppendorfrør med DNA (spytprøve) pr. elev (fra Biotéket) 1 x Eppendorfrør med 500 µl 0,9 % NaCl opløsning (isotonisk saltvand) pr. hold 1 x Eppendorfrør med 400 µl Chelex-opløsning pr. hold 1 x 1,5 ml Eppendorfrør pr. elev 1. Jeres Eppendorfrør med 1 ml cellemateriale spindes i mikrocentrifuge i 1 minut ved max rotation (ca 12.000 rpm). OBS! Husk at centrifugen skal være balanceret. Underviserne hjælper med dette. 2. Supernatanten (væsken se billede) suges op med en pipette og smides i affaldsposen pas på at pelletten (hvid klump i bunden af røret se billede) ikke ryger med ud. 3. Tilsæt 30 µl 0,9 % NaCl, og resuspendér cellerne (Brug whirlmixeren på jeres bord) 4. Ryst røret med chelex, så de små perler blandes med væsken. 5. Tilsæt 100 µl chelex opløsning med en 1000 µl pipette. 6. Eppendorfrøret placeres i en 99 C varmeblok i 10 minutter. 7. Efter 10 minutter tages røret op, og stilles på is til det er kølet af. 8. Ryst røret grundigt og spind det 1 minut i mikrocentrifugen ved max rotation (ca. 12.000 rpm). 9. Overfør 30 µl supernatant (væske) til et nyt eppendorfrør (OBS! Der må ikke komme noget af bundfaldet eller kuglerne med over) og marker tydeligt med jeres tal. I rørene har I jeres DNA! Side 3 af 7

Del 2 klargøring af prøve til PCR Alle materialer I vil have brug for vil stå klar på jeres bord. Hvis I er i tvivl om hvor noget er, så spørg! 1 x Eppendorfrør med 100 µl MilliQ H 2 0 (meget rent vand) pr. hold 1 x Eppendorfrør med 45 µl Primermix 715 (Der står PM715 på røret, indeholder både forward og reverse primer) pr. hold 1 x Eppendorfrør med 20 µl dntp (2mM af hver nukleotid datp, dctp, dgtp og dttp) pr. hold 1 Eppendorfrør med 40 µl GC-buffer pr. hold Phusion DNA polymerase (Har underviseren I kommer op og henter, når I er klar, alle de andre ting skal være blandet) Sørg for at have følgende klar før I begynder Et nyt 1,5 ml eppendorfrør (Der står MasterMix på) Jeres eppendorfrør med DNA Alle reagenser (på nær Phusion DNA polymerase) og pipetter 1 PCR rør pr. elev (SE FORSIDEN) 1. I et nyt tomt eppendorfrør (evt. markeret MasterMix) blandes følgende (samlet blanding, nok til 3 reaktioner): 66 µl MilliQ 40 µl Primermix 16 µl dntp 32 µl GC-buffer (pipettér forsigtigt, da den kan skumme) 2 µl Phusion DNA polymerase (hent hos læreren) 2. Bland indholdet forsigtigt ved at suge op og ned et par gange med en 100 µl pipette indstillet til 30 µl. MasterMixen fordeles ud i 3 PCR-rør (Se billede). Der skal 39 µl i hvert rør. 3. Herefter tilsættes 1 µl af jeres DNA til jeres eget PCR rør med MasterMix. OBS! Husk at skrive jeres nummer på PCR-rørene! 4. Rørene sættes nu i PCR-maskinen, og programmet sættes i gang (startes af underviserne). Til dette forsøg bruges følgende PCR-program (mm:ss): 1. 98 C 2:00 Pre-denaturering (vigtigst ved anvendelse af store templates eksempelvis genomisk DNA) 2. 94 C 0:30 Denaturering 3. 77 67 C 0:30 Primer annealing (-1 C/cyklus) Punkt 2-4 gentages i 10 runder 4. 72 C 1:00 DNA syntetisering 5. 94 C 0:30 Denaturering 6. 70 C 0:30 Primer annealing Punkt 5-7 gentages i 20 runder 7. 72 C 1:00 DNA syntetisering 8. 72 C 5:00 Sikker på DNA syntese af al DNA 9. 4 C Opbevaring af reaktionen indtil afhentning i maskinen Side 4 af 7

Del 3 Støbning af gel til gelelektroforese Da der kun er 10 brønde i hver gel skal der som udgangspunkt støbes 4 geler. Underviserne udpeger de grupper der står for dette. 0,4 g Agarose (er afmålt og findes på fællesbordet i 250mL flaske med blåt låg) 50 ml 1X TAE buffer (buffer med Tris Eddike og EDTA) 5 µl SYBR-safe (har læreren, da det er lysfølsomt og derfor ikke skal stå fremme)! SYBR-safe er potentielt kræftfremkaldende, og der skal derfor bæres handsker i forbindelse med støbning og håndtering af gelen. 1. Tilsæt de 50 ml TAE buffer til glassene med 0,4 g agarose og opløs agarosen i mikrobølgeovnen ved næsthøjeste effekt (det tager ca. 3-5 minutter). Al agarose er opløst når blandingen er helt klar! Husk at have løst låg på flasken og at de bliver meget varme! Brug grydelapperne til at holde på flaskerne, som I finder ved siden af mikroovnen. 2. Når det hele er smeltet afkøles væsken til ca. 60 C (til man kan holde på flasken uden at brænde sig) 3. Tilsæt 5 µl SYBR-safe, som hentes oppe ved fællesbordet Husk handsker! 4. Nu hældes blandingen op i en af støbeformene, hvor kammen er sat i, så der kan dannes brønde i gelen. 5. Gelerne stilles til afkøling i mindst 20 minutter. Dagens program fortsætter i Bioteket, mens vi venter på PCR-reaktionerne. Side 5 af 7

Del 4 Gelelektroforese Støbt gel Jeres rør med PCR-produkt (ét pr. elev) 1 nyt PCR rør pr. elev 30 µl 2X Loading buffer pr. hold Pipette + spidser 1. Gelen dækkes med 1X TAE buffer (elektroforesebuffer) 2. Fra PCR røret overføres 15 µl til et nyt PCR rør (HUSK at skrive nr. på røret). 3. Der tilsættes 15 µl loading buffer til det nye PCR rør. Bufferen vil falde til bunds, så søg for at blande. 4. En underviser tilsætter 6 µl DNA-ladder som demonstration af fremgangsmåden, og hjælper derefter hver gruppe med at påsætte 20 µl af deres prøver m. loading buffer til hver sin brønd.! Når I afsætter prøven, så stik ikke pipettespidsen helt ned i gelen, men lad den svæve i brønden (der er tilsat loadingbuffer for at DNA et falder til bunds i brønden). Husk også at trække pipetten op af brønden igen inden stemplet slippes, så prøven ikke suges op igen. 5. Gelen køres nu ved 100 V og 400 ma i 45 minutter. Her kan I notere i hvilke brønde I har påsat de forskellige prøver: Brønd 1 Brønd 2 Brønd 3 Brønd 4 Brønd 5 Brønd 6 Brønd 7 Brønd 8 Brønd 9 Brønd 10 Elektroforese kar nr: Side 6 af 7

Del 5 Resultatbehandling Grupperne hørende til de forskellige geler, kommer til at tage billede af gelen på skift med en underviser. Billedet sammen med stigen nedenfor bruges til at svare på følgende spørgsmål: 1. Hvilken genotype tyder jeres prøver på? Noter resultatet nedenstående skema (1 for hvert hold): Navn Antal bånd og størrelse Genotype (++, +- eller --) 2. Er der andre bånd på gelen end ved de forventede størrelser? Hvis ja, kan I så komme på nogen grunde til dette? (Undervisere vil gå rundt og høre jeres svar) 100bp DNA Ladder (New England Biolabs) Side 7 af 7