µ ø µ Õ πª æß «(Lates calcarifer)

Transkript

1 µ ø µ Õ πª æß «(Lates calcarifer) À«πÀ π 1 π «ÿ à «È ß 2»ÿ µ å 3 Abstract Wanman, C. 1, Klowklieng, T. 2 and Supamattaya, K. 1 Streptococcosis in seabass (Lates calcarifer) Songklanakarin J. Sci. Technol., 2005, 27(Suppl. 1) : Streptococcus sp. isolated from infected seabass (Lates calcarifer) can grow on medium at ph 9.6 and salinity 0 ppt. The lethal dose where the mortality is 50 percent (LD 50 ) was CFU/ml after 14 days. Diseased fish showed dark body coloration, erratic swimming, exophthalmia, dropsy, pale liver, splenomegaly and hemorrhage in the brain. Blood parameters i.e. haematocrit, haemoglobin, plasma protein and red blood cell of infected fish were decreased, while white blood cells were increased. Histopathological changes in diseased seabass were necrosis, vacuolization and granuloma of the liver, increased number of melanomacrophage in liver and spleen, shrinkage of glomerulus in kidneys, inflammation and necrosis of the spleen and heart, hyperplasia and telangiectasis of the gill, while vacuolization and capsulation of the exophthalmic eyes were observed. Key words : Streptococcosis, seabass, Lates calcarifer 1 Aquatic Animal Health Research Center, Department of Aquatic Science, Faculty of Natural Resources, Prince of Songkla University, Hat Yai, Songkhla Thailand, 2 Satun Coastal Fisheries Research and Development Center, Department of Fisheries, La-ngu, Satun Thailand. 1 «.. ( µ å) 3 Dr. rer. nat. (Aquatic Animal Disease) Õß» µ å»ÿπ å«ÿ æ µ«åπè « µ å æ µ À «ß π π å Õ ÕÀ À à ßÀ«ß «.. ( µ å),»ÿπ åæ π æ È ß µ«åπè Ωíòß ßÀ«µŸ ßÀ«µŸ Corresponding kidchakan.s@psu.ac.th

2 àõ À«πÀ π π «ÿ à «È ß»ÿ µ å µ ø µ Õ πª æß ««. ß π π å « ( æ» 1) : Streptococcosis in seabass (Latex calcarifer) Wanman, C., et al. ÈÕ Streptococcus sp. â ª æß «ËªÉ«Õ Ÿà π ÿà non-haemolytic streptococci â πõ À Ë «ªìπ - à ß 9.6 «Á 0 à«π πæ π à«π «ÿπ ß Õß ÈÕµàÕª æß «à 1.937x10 3 CFU/ml (LD 50 Ë 14 «π) ª ªÉ«µ «È ßµ «µ ÿàπ ªπ Õß À «π àõß âõß µ â «µ Õ π Õß Õß åª Õ Õß Õ ª À ß â ÈÕ â à à Œ µ µ à Œ π à æ ª µ π ª Á Õ ß à µë «à ÿ «ÿ µàª Á Õ «à Ÿß «à ÿ «ÿ à«π ª Ë π ª ß ßæ æ Õß π ÈÕ ËÕª æß «Ë â ÈÕ â àõß âõß æ «à ËÕ æ àõß«à ß πÿ π π ÈÕ ËÕµ π ø À µ «Õß Õ Ÿ π π ÈÕ ËÕ µ π ø π π ÈÕ ËÕ â Õ πÿ π π ÈÕ ËÕÀ «æ Ë π«π Õß å µ «Õß âπ Õ «Ë Àß Õ àõß«à ß ª Ÿ π π ÈÕ ËÕµ ªí ÿ π æ È ß µ«åπè 𪻠æ π Õ à ß æ È ßª æß «Ëß ªì𠵫åπè Õ π Àπ Ëß Ë â «π µ ºŸâ æ È ß µ«åπè Ωí òß µà ª ªí À ª µ «ÈÕ Ë Àâ πª æß «â à ÈÕ Flexibacter columnaris, Vibrio sp. Streptococcus sp. æ ÈÕ Streptococcus sp. Ë ªìπ Àµÿ Õß µ ø µ Õ (Streptococcosis) πª æß «À⪠µ π Ë«ß ( «π µ å, 2543) µ ø µ- Õ ªìπ Ë Èπ Èß πª rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) Ë È ß πª» ËªÿÉπ (Inglis et al., 1993) µàõ æ à πª À ß À Õß (yellow-tail, Seriola quinqueradiata) (Austin and Austin, 1987) ª À (Anguilla japonica) Ë È ß πª» ËªÿÉπ (Kusuda et al., 1978) ª À π (Siganus canaliculatus) Ë È ß πª» ß ª å (Foo et al.,1985) «Èߪ πè À π àπ ª ayu (Plecoglossus altivelis) (Kitao et al., 1981) ª Õ π (channel catfish, Ictalurus punctatus) (Austin and Austin, 1987) ª π Ÿ º (Oreochromis niloticus x O. aureus) (Al-Harbi, 1994) À 𪻠â ß π µ ø µ Õ Èß πª Ÿà (Oxyeleotris marmoratus) ( æ, 2529) µàõ â ß π æ π π È πª æß «(Lates calcarifer) ( æ «π µ å, 2530) À ß π Èπ ªìπµâπ æ «à ß Õß π π È ß ß ÈπÕ à ßµàÕ π ËÕß πª æß «Ë È ß «µâ Õߪ» æ Õ à ß Ëß π ßÀ«ªíµµ π ßÀ«ß ( «π µ å, 2543) π» Èßπ È» ÈÕ Streptococcus sp. Ë Àâ πª æß ««Èß» ª Ë π ª ß ÕßÕß åª Õ Õ π ÈÕ ËÕ æ ËÕ ªìπ π«ß π «ÿ. µ«å Õß Õÿª å «Ÿ ª æß «π 3-4 π È«ÈÕ π «æ È ß µ«åπè Ωí òß Ààß µ ßÀ«ß Ë «Áß ß àµ ÈÕ π È ß «â Ë ß æ øí Õß»Ÿπ å«ÿ æ µ«åπè æ - µ À «ß π π å Õ.À À à. ß È ß π ß ø Õ å π 3 µ π ÀâÕ» µ Õ ««ÿ «Á ÕßπÈ Àâ ß Ë Ë 15 à«π

3 â µ ø µ Õ πª æß «(Lates calcarifer) À«πÀ π πæ π à«π È ß «â àõπ Õß ªìπ «7 «π π à«ß Õß È ß ÀâÕ À Á πè «π 2 ÈÕ Ÿ µ Õπ ª Ë π à πè ÿ «π. ÈÕ ª æß «ªÉ«ÈÕ ª æß «ªÉ«Ë È ß π ßÀ«ß ßÀ«µŸ Õ ª Ë Õ µ «È µ Õ Ë «µ «π ºà âõߪ â«π ª» ÈÕ (aseptic technique) â«ë ÈÕ µ µ Õß π æ πõ À È ß ÈÕ blood agar (BA) à ËÕÿ À Ÿ 35 C π π 24 Ë«ß ËÕ ÈÕ πõ À ÿà Õ π π æ ÈÕ âõ æ ËÕ» ß π- «Õß ÈÕ Õ catalase π π Õß ÈÕ π Èππ È ß π tryptic soy agar (TSA) π â ÈÕ ÿ Ï â«á π tryptic soy broth (TSB) Ë Õ π (glycerin) º Õ Ÿà 15% π ª Á ËÕÿ À Ÿ -70 C π «à π âß πµàõ ª. «1. Õ «π Àâ π ÈÕ Ë Á «â ËÕÿ À Ÿ -70 C È ß πõ À È ß ÈÕ TSA ËÕÿ À Ÿ 35 C π π 24 Ë«ß Õ ß ÈÕ â«πè Õ 0.85% Àâ â «â âπ â ß À Õ µ π McFarland No. 0.5 π ÈÕ ß à «ª â àõß âõߪ æß «ª µ 0.1. âª π ««3-4 π È«ª µâõß «Áß ß à ßÕ Õß ÿ «ÿ ªìπª Ë â«πè Õ â âπ 0.85% π ÈÕ Streptococcus sp. À ß ÈÕ È ß «â π ßÕ Õß â«èõµ «π âõ. Á µ «Õ à ß Õß ÈÕ Streptococcus sp. «â Õ µàõ ª 2. Õ ÿ µ ß «Õß ÈÕ Streptococcus sp. π ÈÕ Ë ÿ Ï Õ ÿ µ ß «Õ â ß Õπ å catalase oxidase àõ Á Õ ß (haemolytic) π BA πµàõ «ªìπ - à ß Ë 9.6 Õ À Ë Õ 6.5% Õÿ À Ÿ µë Ë 10 C Ÿß Ë 45 C Õ àõ µ π ªÑß sodium hippurate esculin arginine Õ «âπè µ π µà ßÊ Õ arabinose, glucose, lactose, maltose, mannitol, sucrose, trehalose saccharose ÿ Õ API 20 STREP (biomérieux, France) 3. Õ ««Õß ÈÕ Streptococcu sp. µàõ ªØ «π π ÈÕ Streptococcus sp. π Ë «Ë πõ À È ß ÈÕ TSA ππè Õª Õ ÈÕ â âπ 0.85% Àâ â «â âπ â ß À Õ µ π McFarland No. 0.5 π Èπ â âæ π Ë ª Õ ÈÕ ÿà ß π ÈÕ Streptococcus sp. â«π ª Ë ß πõ À È ß ÈÕ Mueller Hinton Agar (MH agar) Àâ Ë«π æ ÈÕ π Èππ ºàπ (disc) π µà ßÊ «ß ß πõ À MH agar à ËÕÿ À Ÿ 35 C π π 24 Ë«ß â«ß««ß (clear zone) Ë Èπ π Èπ ª º âµ ß µ π π ª º ««µàõ ªØ «π 4.» «ÿπ ß Õß ÈÕ Streptococcus sp. ÈÕ Ë ª ÈÕ µ µà ß 5 Ëß ªìπ ª ÈÕµË ÿ Ë À⪠µ 100% ª ÈÕ Ÿß ÿ Ë à À⪠µ µà â ª æß «π 3-4 π È«π«π 10 µ «Õß 3 È â Á π 26G x 1 π È«â àõß âõß πª 0.1./µ «à«π ÿà «ÿ â«πè Õ â âπ 0.85% π È ß πµÿâ π 44x19x20 π È«Ë ÿπè «Á 15 à«π πæ π ª µ πè 100 µ π µ π µà «πà ß ÈÕ π âõ Ÿ Ë â π«ld 50 Ë 14 «π µ «Õß Reed Muench (1938) 5.» Õß åª Õ Õß Õ ª æß «Ëµ ÈÕ Streptococcus sp. ÈÕ Streptococcus sp. Ë «â âπ Õß LD 50 Ë 14 «π â àõß âõߪ µ «0.1. ⪠π 3-4 π È«â«π ªª àõ ß πµÿ Õß ÀâÕ»µ Õ «ß µõ Á µ «Õ à ß Õ ª æß «π«π 10 µ «Ë «1, 3, 5,

4 Ë Ë Streptococcosis in seabass (Latex calcarifer) Wanman, C., et al. 7, «π À ß Ë ÈÕ À⪠â«quinaldin 1-2 À / µ ª π «π Õ âπ Õ «À ß (caudal vein) â Õ π 1. Á π 25G x 1 π È«Ë Õ â«1% EDTA ªìπµ «ªÑÕß π Õ Áßµ «(anticoagulant) µ «Õ à ß Õ âπ À à Õß åª Õ µà ßÊ π 3-6 Ë«ß (, 2538) π «ÀåÕß åª Õ Õ â à à Œ µ µ (Larsen and Sneizsko, 1961) ª Œ π «à ª µ π πæ (Lowry et al., 1951) ª Á Õ ß ª Á Õ «6.» æ æ π ÈÕ ËÕª æß «µ ÈÕ Streptococcus sp. π µ «Õ à ߪ æß «Ëµ ÈÕ Streptococcus sp. π«π 20 µ «Á µ «Õ à ß π ÈÕ ËÕ ªî àõß âõß µ Õ««à«πµà ßÊ Õ Àß Õ Õ««π â à µ µ â À «Õß Õß ππè øõ å π â âπ 10% æ ËÕ æ Õß π ÈÕ ËÕ À ß Õß ππè ß à «ªìπ «72 Ë«ß ßπ Õ««ÈßÀ ºà π ÈπµÕπ π ÈÕ ËÕ â ËÕß Automatic Tissue Processor ºà π «â âπ Õß Õ ÕŒÕ åµà ßÊ 50 ß 100% æ ËÕ ßπÈ ÕÕ å ⫺à π ß π Õ æ æ π â«ωíß π æ æ π µ â«ëõß µ Àπ 3-4 Õπ âõ â«œ Õ π Õ Õ π µ «Õß Humason (1979) æ ËÕ ªìπ å «µ «Õ ª Ë π ª ß Õß π ÈÕ ËÕ â âõß ÿ»πå π æ (Olympus AX 70) º Õß 1. ß π«ÿ µ Õß ÈÕ Streptococcus sp. π Õß ÈÕ Streptococcus sp. Ë πõ À È ß ÈÕ TSA ËÕÿ À Ÿ 35ºC ªìπ «24 Ë«ß Õ «ÿ àπ π πÿπ π ª å Ÿª à ß µàõ π ªìπ µ «ËÕπ È ß πõ À È ß ÈÕ BA à àõ Á Õ ß Àâ π Õß ÈÕÕ Ÿà π ÿà non-haemolytic Streptococcus sp. Õ «π Àâ æ «à ÈÕ Streptococcus sp. Ë â ª æß «ËªÉ«π«π 20 µ «Àâ â ÈßÀ πõ π È ßæ «à ÈÕ Streptococcus sp. Ë â à«π Õß Õߪ æß «ËªÉ««π Àâ â Ÿß «à ÈÕ Streptococcus sp. Ë â à«πõ ËπÊ Õߪ ªÉ«º Õ ÿ µ ß «(Table 1) Õ ««Õß ÈÕµàÕ ªØ «π ËÕπ ÈÕ Streptococcus sp. Õ ««µàõ ªØ «π â 12 π æ «à ÈÕ ÈÕµàÕ ÕÕ π Õ π Õ Õ µà ««µàõ Õ øìππ ø äõ + µ æ πõ åø ÁÕ π ÕÕ Ë µµ â π ø ÁÕ π æππ π µ - æ π µ øÿ π Õ π ÕÕ π Õ æ π (Table 2) 2. «ÿπ ß Õß ÈÕ Streptococcus sp. Õ «ÿπ ß Õß ÈÕ Streptococcus sp. ÈÕ Ë «â âπµà ßÊ Àâ ઠæß «π π È«πÈ Àπ Ë 4.97±1.24 «â àõß âõß â«π «π«π ª æß «Ëµ π º Ë â π«à LD 50 æ «à à à 1.937x10 3 CFU/ml À Õ à Ÿ π ß Ë 540 π π µ à æ «à Õ Õß ª æß «Ë â ÈÕ Streptococcus sp. µ «ªìπ È ßµ «ËÕπ Ë â µà ËÕ â ÈÕ ªìπ «π π Õ µ ÿàπ µ ªπ â ß «À Õ 2 â ß Õß À «π àõß âõß µ µ â «Õß ªìπ æÿ 3. Õß åª Õ Õ Õߪ æß «Ë â ÈÕ Streptococcus sp. «ÀåÕß åª Õ Õ ª æß «Ë â ÈÕ Streptococcus sp. Ë «1, 3, 5, 7, «π æ «à À ß ª â ÈÕ 1 «π à Œ µ µ

5 µ ø µ Õ πª æß «(Lates calcarifer) À«πÀ π Table 1. Biochemical tests of the bacterial isolate and the results obtained by other authors. Present isolate Donyadol et al. (2000) Perera et al. (1994) Seabass Hybrid tilapia Gram stain Haemolysis γ β β Catalase Oxidase Mortality Growth in 6.5 %NaCl Tolerance of: ph temp 10 C temp 45 C Indole - NT NT Pyruvate OF - medium - NT NT MR test - - NT Hippurate - NT - Esculin + + NT Pyrrolidonyl 2 naphthylamide + NT NT α-d-galactopyranoside - NT NT β-d-glucuronate - NT NT β-d-galactopyranoside - NT NT 2-naphthyl phosphate - NT NT L-leucine-2-naphthylamide - NT NT Arginine Glycogen - NT NT Acid from: Glucose Sucrose Saccharose - NT NT Lactose Mannitol Maltose + Dextrose - NT NT Sorbitol - NT - Ribose + NT NT L-Arabinose Trehalose Inulin - NT - Raffinose - NT - Xylose Hydrolysis: Starch Gelatin - NT - + = positive - = negative NT = not test

6 Streptococcosis in seabass (Latex calcarifer) Table 2. Susceptibility of Streptococcus sp. to antimicrobial agents. antibiotics clear zone (mm.) result Chloramphenicol (30 µg) 33 S Norfloxacin (10 µg) 29 S Oxolinic acid (2 µg) 0 R Oxytetracyclin (30 µg) 30 S Sarafloxacin (5 µg) 28 S Sulfamethoxazol trimethroprim (25 µg) 35 S Nalidiic acid (30 µg) 0 R Penicillin (10 µg) 32 S Trimethroprim (5 µg) 30 S Nitrofurantoin (300 µg) 32 S Erythromycin (15 µg) 30 S Ampicillin (10 µg) 40 S Wanman, C., et al. R = resistance S = susceptible Ÿß «à ÿ «ÿ µàà ß π Èπ ßµË «à ÿ «ÿ Õ à ß π ß µ (p<0.05) (Table 3) à µë ÿ π«π Ë 10 À ß â ÈÕ À ß π Èπ à Ë æ Ë Èπ π«πâ â Ÿà «Õߪ ª µ (Figure 1) à Œ π à µë «à ÿ «ÿ Õ à ß π ß µ (p<0.05) (Table 4) Ëß à µë ß µ «Õß â ÈÕ ËÕ ª ÿ «ÿ (Figure 2) à«π à æ ª µ π à µë «à ÿ «ÿ Õ à ß π ß µ (p<0.05) (Table 5) Ëß à ßµË π«π Ë 5 7 À ß â ÈÕ µà À ß π Èπ à æ Ë ÈπÕ à ß «Á«â à Ÿ «Õߪ ª µ (Figure 3) À π«π Á Õ ß ßÕ à ß «Á«π à«ß 3 «π ß ËÕ Ê µ «Õß â ÈÕ π«π Á Õ µë π à«ß«π Ë 7-14 «π À ß â ÈÕ à µë «à ÿ «ÿ Õ à ß π ß µ (p<0.05) (Table 6) (Figure 4) πõ π È ßæ «à π«π Á Õ «æ Ë ÈπÕ à ß «Á«π à«ß«π Õß â ÈÕ ß Á πâõ π«π Ë 3 µàà ß π Èπ æ Ë Èπ æ ß Á πâõ Ëß à Ÿß «à ÿ «ÿ Õ à ß π ß µ Figure 1. Hematocrit in seabass to Streptococcus sp. infection.

7 à Ë Table 3. Hematocrit in seabass to Streptococcus sp. infection. µ ø µ Õ πª æß «(Lates calcarifer) À«πÀ π Treatment Post Streptococcus sp. (days) Control 25.52±0.58 NS 24.84±2.63 a 25.41±2.17 b 27.00±0.81 b 25.04±1.39 b 23.19±2.19 b 25.23±0.42 b Streptococcus sp ±0.58 NS 28.35±4.32 b 24.23±0.37 a 20.40±0.48 a 19.06±1.04 a 17.11±0.49 a 18.33±1.89 a Mean values in the same row with same superscript are not statistically different at p<0.05. Table 4. Hemoglobin in seabass to Streptococcus sp. infection. Treatment Post Streptococcus sp. (days) Control 6.23±1.06 NS 8.18±0.69 b 8.38±0.70 b 6.99±0.21 b 7.44±0.41 b 7.73±0.78 b 6.77±0.13 b Streptococcus sp. 6.23±1.06 NS 6.92±0.15 a 5.85±0.21 a 4.71±0.71 a 4.15±1.12 a 4.03±0.67 a 4.08±0.28 a Mean values in the same row with same superscript are not statistically different at p<0.05. Table 5. Plasma protein in seabass to Streptococcus sp. infection. Treatment Post Streptococcus sp. (days) Control 4.76±0.23 NS 5.09±0.32 b 5.55±0.38 b 4.53±0.42 b 6.20±0.65 b 4.96±0.30 a 4.84±0.25 NS Streptococcus sp. 4.76±0.23 NS 4.42±0.06 a 4.95±0.16 a 3.31±0.31 a 3.30±0.76 a 5.26±0.74 b 4.89±0.55 NS Mean values in the same row with same superscript are not statistically different at p<0.05. (p<0.05) (Table 7) π«π Ë â ß ÿ «ÿ π«π Ë 14 (Figure 5) 4. ßæ æ Õߪ æß «Ëµ ÈÕ Streptococcus sp.» æ æ Õߪ æß «Ëµ ÈÕ Streptococcus sp. æ «à π ÈÕ ËÕª ˵ ÈÕ àõß«à ßÕ Ÿà π å ªìπ π«π ËÕ Õß åµ (Figure 6) «Èß πÿ (granuloma) Ëß π ø π«π Õ Ÿ π ø π«π Õ Ÿ à π π ÈÕ ËÕ µ à«πà ß (Figure 7) π ÈÕ ËÕ â (Figure 8) πõ π È ßæ À µ «Õß Õ Ÿ π π ÈÕ ËÕ µ à«π À ß (Figure 9) π π ÈÕ ËÕÀ «æ «à Õ πÿ Õß â π ÈÕÀ «(Figure 10) π à«π Õß π ÈÕ ËÕ Àß Õ æ «à ËÕ µàõ π Õß Àß Õ (Figure 11) πõ π È ßæ «à π ÈÕ ËÕµ ËÕ æ Õß π åµ æ àõß«à ß ª Ÿ Ëß ÈÕ Streptococcus sp. Õ Ÿà π (Figure 12) «åº Õß ÈÕ ª æß «ËªÉ«π ßÀ«ß æ «à ÈÕ Ë â ªìπ ÈÕ Streptococcus sp. Ëß ß π«ÿ µ ß «Õ å Ÿª à ß µ «µàõ π ªìπ ÈπÊ Ëß â ß ß π Õß «π µ å (2543) Ë ÈÕ ª æß «Ë ªÉ«π Õ. À Ëß.ªíµµ π µ.π Õ. π. ß ËÕ Õ àõ Á Õ æ «à à

8 Table 6. Red blood cell in seabass to Streptococcus sp. infection. Streptococcosis in seabass (Latex calcarifer) Post Streptococcus sp. (days) Wanman, C., et al Control (x 10 6 cell/mm 3 ) 5.95±0.42 NS 4.81±0.26 a 5.24±0.75 b 5.11±0.61 b 6.19±1.01 b 4.66±0.55 b 5.89±0.55 b Streptococcus sp. (x 10 6 cell/mm 3 ) 5.95±0.42 NS 5.08±0.22 b 3.72±0.43 a 4.27±0.43 a 3.41±0.19 a 3.33±0.12 a 3.37±0.48 a Mean values in the same row with same superscript are not statistically different at p<0.05. Table 7. White blood cell in seabass to Streptococcus sp. infection. Post Streptococcus sp. (days) Control (x 10 4 cell/mm 3 ) 3.77±0.66 NS 4.61±0.62 a 4.55±1.61 a 4.13±0.34 ab 4.53±0.83 a 5.50±1.33 a 5.12±0.63 NS Streptococcus sp. (x 10 4 cell/mm 3 ) 3.77±0.66 NS 8.13±1.21 b 5.93±0.83 b 6.63±0.29 b 7.48±0.44 b 7.21±1.07 b 5.64±1.49 NS Mean values in the same row with same superscript are not statistically different at p<0.05. Figure 2. Hemoglobin in seabass to Streptococcus sp. infection. «ß (clear zone) Àâ π Õß ÈÕ Streptococcus sp. Õ Ÿ à π ÿ à non-haemolytic Ëß Õ âõß ß π Õß æ «π µ å (2530) Ë â«àå π Õß ÈÕ Streptococcus sp. ªìπ non-haemolytic ºŸ â«àâ Àµÿº «à πà ªìπº â Õ π π Õ â«àæ «ß ß Àâ π Õß ÈÕ Streptococcus sp. ªìπ non-haemolytic à«π π» Èßπ È ËÕ â Õ π Õ Á à «ß Figure 3. Plasma protein in seabass to Streptococcus sp. infection. àπ π ß Àâ â ªìπ non-haemolytic Ëß µ µà ß ß π Õß «π µ å (2543) Ë ÈÕ Streptococcus sp. ªìπ β-haemolytic º Õ «π æ «à ÈÕ Streptococcus sp. Ë â Õß «ÿπ ß Ÿß «à ÈÕ Ë â Õ««Õ Ëπ π ËÕß ÈÕ Ë â Õß «ÿ Ï «à Õ««Õ Ëπ àπ «ß π Õß Kitao (1982) µ ÈÕ π Õß

9

10

11 à µ ø µ Õ πª æß «(Lates calcarifer) À«πÀ π π ÕÕ Ë µµ â π ø äõ + µ - æ ø äõ π æππ π µ æ π µ øÿ π Õ π ÕÕ π Õ æ π µà ÈÕ µàõ ÕÕ π Õ π Õ Õ À Õ øìππ π µ øÿ π Õ ππ Èπ ªìπ ËÀâ Àâ â π æ È ß µ«åπè æ ËÕ µà À 𠵫åπè Ë à âπ àπ ª «ß À ÕæàÕ à æ π ÿ åπà π Õ øìππ π µ øÿ π- Õ π â π «ÿ π ß æ øí â Ëß π Õ ««ÈÕµàÕ ªØ «π Õß ÈÕ Ë â π Èßπ È â ß ÈÕ Streptococcus sp. Ë ß π ª À π πª» ß ª å (Foo et al., 1985) ª π Ÿ º π Á (Perera et al., 1994) ª turbot π ªπ (Doménech et al., 1996) â µâ π ÿ æ π «ÿ Ë ÈÕ Streptococcus sp. Ë «ÿ Õ à ß âº ß ß πµà ßÊ àπ Kusuda Takemaru (1987) â josamycin π ª À ß À Õß Ëµ ÈÕ Streptococcus sp. º ß πõ À À⪠π πõ µ 20./ª 1. µ µàõ π 5 «π â πõ µ 30./ª 1. µ µàõ π 3 «π æ «à µ ÈÕ Streptococcus sp. πª â Ëß Àâª Õ µ ß 100% à«π Aoki (1989) â lincomycin tetracyclin πª À ß À Õß Ëµ ÈÕ Streptococcus sp. πõ π È Ghittino Prearo (1992) â erythromycin º Õ À Àâ π πõ µ 50./ª 1. µ µàõ π 7 «π πª rainbow trout ˵ ÈÕ S. faecalis À Õ S. faecium À à LD 50 æ «à à à 1.937x 10 3 CFU/ml À Õ à Ÿ π ß Ë 540 π π µ à Ëߪ æß «Õ µ ÈÕ â ßà «Á«ª ÈÕ Ë À⪠µ ÈπÕ Ÿ π Õߪ â ª π Á Õ µ ÈÕ ßà Èπ ß â«à ª ÈÕ µë Ëß Õ âõß» Õ µ ÈÕ Streptococcus sp. πª æß «ª π ª gulf killifish (Rasheed and Plumb, 1984; Bromage et al., 1999; Evans et al., 2002) à«πõ Õß Ëª Ø Àâ ÀÁπ π Õß Èßπ È æ «à ª ˵ ÈÕ Streptococcus sp. Õ «à πè «ß «à π ßµ «ËÕπ Ë â µ «È µ ªπ â ß «À Õ 2 â ß µ ÿàπ Õß À «π àõß âõß àπ «ß π µ ÈÕ Streptococcus sp. πª æß «Ë È ß π ßÀ«ªíµµ π ß ( «π µ å, 2543) à«èߪ Ÿà ( æ, 2529) ª π ( æ, 2539) πõ π È ßæ Õ Õ ËπÊ Õ àπ µ Õ «µ æÿâß â 𠫪 «µ ««Èß º «µ «(Plumb,1994) à«π À à ⫵ ÈÕ Streptococcus sp. º µàõµ Ëß æ â àõ º «µ «πè µ Õß π ÈÕ ËÕ «optic nerve «Èß π åµ (Inglis et al., 1993) À Õ ππ Èπæ «à µ µ â «Õß ªìπ æÿ àπ «ß π πª π ( æ, 2539) ª À ß À Õß (Sano and Fukuda, 1987) ª rabbitfish (Yuasa et al., 1999) º «ÀåÕß åª Õ Õ ª æß «Ë â ÈÕ Streptococcus sp. Ë «1, 3, 5, 7, «π æ «à à Œ µ µ ßµË «à ÿ «ÿ Õ à ß π ß µ àπ «Õß Õß Foo (1985) à µë ÿ π«π Ë 10 À ß â ÈÕ ß«à ª Õ Ÿà π «Õ ß (anemia) À ß π Èπ à Œ µ µ æ Ë Èπ π«πâ Ë â à Ÿ «Õߪ ª µ à Œ π à µë «à ÿ «ÿ Õ à ß π ß µ Ëß à ßµ «Õß â ÈÕ à Œ π «æ π å à Œ µ µ ËÕ à Œ µ µ ß àõ àߺ Àâ à Œ π ß µ ª â«(cardwell and Smith, 1971; Hammerschlag and Bejarano, 1991) πõ π È Foda (1973) ß π «à ª atlantic salmon Ë ªìπ øÿ π Ÿ à Œ µ µ à Œ π ßµË «à ª ª µ Õ à ß ÀÁπ â µ ß π Õß Takahashi (1984) ª Ë ÈÕ Aeromonas hydrophila à Œ µ µ à Œ π ßµ «Õß µ ÈÕ Ëß ß«à ËÕª àõ ª Àâ ªìπ Èπ à Œ µ µ à Œ π Ëß ß (Cruz and Muroga, 1989; Kakuta and Namba, 1990) π à«π

12 È Ë Streptococcosis in seabass (Latex calcarifer) Wanman, C., et al. Õß à æ ª µ π à µë «à ÿ «ÿ Ëß à ß µë π«π Ë 5 7 À ß â ÈÕ µàà ß π Èπ à æ Ë ÈπÕ à ß «Á«â Ÿà «Õߪ ª µ àπ «ß π Õß Taylor (1977) À ª Á Õ ß ßÕ à ß «Á«π à«ß 3 «π ß ËÕ Ê µ «Õß â ÈÕ ª Á Õ ßµË ÿ π à«ß«π Ë 7-14 À ß â ÈÕ ª Á Õ ßµË «à ÿ «ÿ Õ à ß π ß µ àπ «ß π Õß àß» (2525) Pearson (1994) πõ π ª Á Õ «æ Ë ÈπÕ à ß «Á«π à«ß«π Õß â ÈÕ àπ «ß π Õß Lehmann (1987) ßµË ÿ π«π Ë 3 µàà ß π Èπ ª Á Õ «æ Ë Èπ æ ß Á πâõ ª Ë â ß ÿ «ÿ π«π Ë 14 ˪ Á Õ «ªìπµ «àß È ««πµ «ª (Mcleay and Gordon, 1977) à«π À à ⫪ Ë ÈÕ à Õß åª Õ Õ ( à Œ µ µ à Œ π æ ª µ π) µë «à ÿ «ÿ Õ à ß π (Harbell et al., 1979; Qoentel and Aldrin, 1986; Lehmann et al., 1987) πõ π È à Õß åª Õ Õ À à π È ª Ë π ª ß â π Õ ËπÊ àπ ª Ë π ª ß Õ߃ Ÿ À Õ æ Õßµ «ª (Banks et al., 1971) æ (, 2530) À Õ Õ À ßµ «àπ «µ π (Agrawal and Mahajan, 1980) «µ πõ (Moccia et al., 1984)» ß â πæ æ Õß π ÈÕ ËÕª æß «Ëµ ÈÕ Streptococcus sp. æ «à π ÈÕ ËÕµ àõß«à ßÕ Ÿ à π å π π𠫪 Õ å ªìπ π«π Èß π Á π À à ËÕ Õß åµ Õ π ËÕß Ë å «µæ º ª µ «Èß πÿ ø Õ Ÿà ªìπ π«π Ëß Õ âõß Õß Õß Rasheed (1985) Ëæ «à π ÈÕ ËÕµ ª bullminnows (Fundulus grandis) Ë µ ÈÕ Streptococcus sp. Õß å ËÕ æ àõß«à ß πÿ à«π «º ª µ Õß π ÈÕ ËÕÕ Ëπ π» Èßπ È æ π ø Õ Ÿ à ªìπ π«π π π ÈÕ ËÕ µ à«πà ß â ÀÁπ ªìπ ÿà å πè µ ÕàÕπ ËÕ âõ â«h&e ( ÿª, 2536) µà â πª ËÕ ÿ À Õª Ë ªìπ (Ferguson,1989) π ø ß À Õ Ëß π«π π Õß - π ø ÈπÕ Ÿà Õ ÿª «æ «à ª Ë Õ ÿ π«π π Õß - π ø æ Ë Èπ (Ferguson,1989)» Èßπ Èæ π ø π«π º ª µ π ËÕß µõ πõßµàõ µ ÈÕ Ëß Õ âõß ß π Ë«à µ ª pisces (Cichlasoma dimerus) Ë ªìπ π«π π ø æ Ë Èπ π À à «à ª Ë à ªìπ πõ π È ßæ «º ª µ Õß π ÈÕ ËÕ µ à«πà ß æ «à À µ «Õß Õ Ÿ àπ «µ ÈÕ Streptococcus sp. πª π ª Õ π (Chang and Plumb, 1996) à«π π ÈÕ ËÕÀ «æ «à Õ πÿ π â π ÈÕÀ «À «º ª µ Õß π ÈÕ ËÕ Àß Õ π Èπ æ «à ËÕ µàõ π Õß Ë Àß Õ π ËÕß æ Ë π«π Õß å º ª µ µ «Õß âπ Õ «Ë Àß Õ ßæ «º ª µ Õß π ÈÕ ËÕµ ËÕ æ Õß π åµ æ àõß «à ß ª Ÿ Ëß ÈÕ Streptococcus sp. Õ Ÿà π ª Ë π ª ß Õß π ÈÕ ËÕ π Õß Èßπ È «â ß µ ÈÕ Lactococcus garvieae πª rainbow trout (Eldar and Ghittino, 1999) ÈÕ Pseudomonas fluorescens πª π (Miyazaki et al., 1984a) πõ π È ß Õ âõß ß π Õß Miyazaki et al. (1984b) æ «à ª π µ ÈÕ Streptococcus sp. Õ µ Õß π ÈÕ ËÕ «µ Ëß ø Õ Ÿà π «ËÕ «Èß ª Ÿ ÈÕ Streptococcus sp. Õ Ÿ à π Õ πÿ π â π ÈÕÀ «µ ËÕ æ Õß åµ àõß«à ß π π ÈÕ ËÕ â ø Œ π æ Ë Èπ π ÈÕ ËÕ µ À µ «Õß Õ- Ÿ Œ π äõª æ «Èß µ Õß å Õß

13 µ ø µ Õ πª æß «(Lates calcarifer) À«πÀ π µ ÈÕ µ ø µ Õ πª æß «π «à «µàõ æ È ßª æß «πª» π ËÕß àõ Àâ «Ÿ À⺠º µ ß π«ß æ π Ë «â«π π ªÑÕß π ªìπµâÕß» µàõ ª µµ ª» Õ Õ ÿ π ß π «Ààß µ Ë â Àâ ÿπ π πÿπ «π Èßπ È ( Ë ß π ÿπ ª. 2/JSPS 13/2546) Õ Õâ ßÕ ß æ ÕßÕÿ ª π. Õ «Ë 176. 𫪠ßπÈ ª ß «ß µ À å.»ÿ µ å Ÿ à ÕªØ µ æ ª. « µ å æ µ À «ß π π å. æ π å, ÿ µº π»ÿ µ å Streptococcus sp. Ë ªìπ Àµÿ Õß πª Ÿà. «. ß π π å («) 8: «π µ å π, æ ÿ æá» Õß- «å ÿ µ Õß ÈÕ ÈÕ β-hemolytic Streptococcus sp. πª æß «Ë È ß π ßÀ«ªíµµ π ßÀ«ß. Õ «Ë 8/2543. π«æ È ß µ«åπè Ωí òß ßÀ«ß ª ß «ß µ À å. àß» À «Ï À «Ï ª Ë π ª ß ÿ µ Õß Õ à«πª Õ ÕÕÕπ Õß æ à πª ÿ â π Ë ªìπ ÈÕ Õ å π Œ øî à. «. µ» µ å(«) 20: æ ÿ «π µ å π Ë non-hemolytic Streptococcus sp. π ª æß «. Õ «Ë 6/2530. π «æ È ßπÈ Ωí òß ßÀ«ß ª ß «ß µ À å. ÿ µº π,»ÿ µ å, «ÿ æ æ À ÿπ Õß À Ë «« º Õß å øÿ πµàõ ª Ë π ª ß ÕßÕß åª Õ Õ ß ª â ß Õπµ Õ È πª ÿ â π (Clarias batrachus). «. ß π π å («) 9: ÿª π ÿµ, µπ Õ È ÿ« π ÈÕ ËÕ Õߪ àõπ. ª ß À «µ» µ å. Agrawal, N.K. and Mahajan, C.L Hematological changes due to vitamin C deficiency in Channa punctatus Bloch. J. Nutrition 110: Al-Harbi, A.H First isolation of Streptococcus sp. from hybrid tilapia (Oreochomis niloticus x O. aureus) in Saudi Arabia. Aquacult. 128: Aoki, T., Takami, K. and Kitao, T Spread of drugresistant strains of Streptococcus sp. in yellowtail farms. The Second Asian Fisheries Forum. Proceeding of the Second Asian Fisheries Forum. Tokyo, Japan April 1989 pp Austin, B. and Austin, D.A Bacterial fish pathogens: Disease in farmed and wild fish. Chichester, Ellis Horwood, UK. Bank, J.L., Fowler, L.G. and Elliott Effects of rearing temperature on growth, body form and hematology of fall chinook fingering. Prog. Fish Cult. 33: Bromage, E.S., Thomas, A. and Owens, L Streptococcus iniae, a bacterial infection in barramundi Lates calcarifer. Dis. Aquat. Org. 36: Cardwell, R.D. and Smith, L.S Hematological manifestation of vibriosis upon juvenile chinook salmon. Prog. Fish. Cult. 33: Chang, P.H. and Plumb, J.A Effects of salinity on Streptococcus infection of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. J. Appl. Aquat. 6: Cruz, M.C. and Muroga, K The effects of Vibrio anguillarum extracellular products on Japanese eels. Aquacult. 80: Doménech, A., Fernandez-Garayzabal, J.F., Pascual, C., Garcia, J.A., Cutul, M.T., Moreno, M.A., Collins, M.D. and Dominguez, L Streptococcus in cultured turbot, Scophthalmus maximus

14 Streptococcosis in seabass (Latex calcarifer) Wanman, C., et al. (L.), associated with Streptococcus parauberis. J. Fish Dis. 19: Eldar, A. and Ghittino, C Lactococcus garvieae and Streptococcus iniae infections in rainbow trout On-corhynchus mykiss: similar, but different diseases. Dis. Aquat. Org. 36: Evans, J.J., Klesius, P.H., Gilbert, P.M., Shoemaker, C.A., Al Sarawi, M.A., Landsberg, J., Duremdiz, R., Al Marzouk, A. and Al Zenki, S Characterization of β-haemolytic Group B Streptococcus agalactiae in cultured seabream, Sparus auratus L., and wild mullet, Liza klunzingeri (Day) in Kuwait. J. Fish Dis. 25: Evans, J.J., Shoemaker, C.A. and Klesius, P.H Distribution of Streptococcus iniae in hybrid striped bass (Morone chrysops x M. saxatilis) following nare inoculation. Aquacult. 194: Ferguson, H.W Systemic Pathology of Fish. A text and Atlas of Comparative Tissue Responses in Diseases of Teleosts. Iowa State University Press/Ames. Foda, A Changes in hematocrit and hemoglobin in Atlantic salmon, Salmo salar as a result of furunculosis disease. J. Fish Res. Board Can. 30: Foo, J.T.W., Ho, B. and Lam, T.J Mass mortality in Siganus canaliculatus due to Streptococcal infection. Aquacult. 49: Ghittino, P. and Prearo, M Report of Streptococcosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Italy: Preliminary note. Boll. Soc. Ital. Patol. Ittica. 8: 4-9. Hammerschlag, E. and Bejarano, I Study of variables in the blood rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, during the breeding period, for the prediction of disease promeness. Fish Fish. Isr. 24: Harbell, S.C., Hodgins, H.O. and Schiewe, M.H Studies on the pathogenesis of vibriosis in coho salmon Oncorhynchus kisutch (Walbaum). J. Fish Dis. 2: Humason, G.L Animal Tissue Techniques. 4 th ed. W.H. Freeman, San Francisco. Inglis, V., Roberts, R.J. and Bromage, N.R Bacterial Disease of Fish. Academic Press, New York. Kakuta, I. and Namba, K Isometric twitch tension of lateral muscle in carp, Cyprinus carpio L., with sekoke disease. J. Fish Dis. 13: Kitao, T Methods for detection of Streptococcus sp., causative bacteria of streptococcal disease of cultured yellowtail (Seriola quinquiradiata). Fish Pathol. 17: Kitao, T., Aoki, T. and Sakoh, R Epizootic caused by b-haemolytic Streptococcus species in cultured freshwater fish. Fish Pathol. 15: Kusuda, R. and Takemaru, I Efficacy of josamycin against experimental Streptococcal infection in cultured yellowtail. Nippon Suisan Gokkaishi. Bull. Jap. Soc.Sci. Fish 53: Kusuda, R., Komatsu, I. and Kawai, K Streptococcus sp. isolated form an epizootic of culture eels. Bull. Jap. Soc. Sci. Fish. 44: Larsen, H.N. and Snieszko, S.F Modification of the microhematocrit technique with trout blood. Trans Amer. Fish. Soc. 90: Lehmann, J., Stuerenberg, F.J. and Mock, D The changes of the haemogram of the rainbow trout (Salmo gairdneri Richardson) to an artificial and a natural infection with Yersinia ruckeri. Z. Angew Ichthyol J. Appl. Ichthyol. 3: Lowry, O.H., Rosebrough, N.J., Farr, A.L. and Randall, R.J Protein measurement with the folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 140: Mcleay, D.J. and Gordon, M.R Leucocrit: a simple hematogical technique for measuring acute stress in salmonid fish, Including stressful concentrations of pulpmill effluents. J. Fish Res. Board Can. 34: Miyazaki, T., Kubota, S.S. and Miyashita, T. 1984a. A histopathological study of Pseudomonas fluorescens infection in tilapia. Fish Pathol. 19: Miyazaki, T., Kubota, S.S., Kaige, N. and Miyashita, T. 1984b. A histopathological study of Streptococcal disease in tilapia. Fish Pathol. 19:

15 µ ø µ Õ πª æß «(Lates calcarifer) À«πÀ π Moccia, R.D., Hung, S.S.O., Slinger, S.J. and Ferguson, H.W Effect of oxidized fish oil, vitamin E and ethoxyquin on the histopathology and haematology of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson. J. Fish Dis. 7: Pearson, M.D., Chinabut, S., Karnchanakharn, S. and Somsiri, T Jaundice disease in the farmed catfish hybrid, Clarias macrocephalus (Gunther) x C. gariepinus (Buechell), in Thailand. J. Fish Dis. 17: Perera, R.P., Johnson, S.K., Collins, M.D. and Lewis, D.H., Streptococcus iniae associated with mortality of Tilapia nilotica x T. aurea hybrids. J. Aquat. Anim. Health 6: Plumb, J.A Health maintenance of cultured fish: Principal Microbial Disease. CRC Press, Inc. U.S.A. Qoentel, C. and Aldrin, J.F Blood changes in catherized rainbow trout (Salmo gairdneri) intraperitoneally inoculated with Yersinia ruckeri. Aquacult. 53: Rasheed, V., and Plumb, J.A Pathogenecity of a non-haemolytic group B Streptococcus sp. in gulf killifish (Fundulus grandis, Baird and Girard). Aquaculture 37: Reed, L.J. and Muench, H A simple method of estimating fifty percent end points. Am. J. Hyg. 27: Sano, T. and Fukuda, H Principal microbial diseases of mariculture in Japan. Aquacult. 67: Takahashi, T Appearance mechanisms of haematological symptoms of the Aeromonas disease in carp. The Journal of Shimonoseki University of Fisheries 32: Taylor, P.W Serum protein and hemoglobin characteristics of various catfishes (Ictarulus sp.) under normal and disease conditions. Ph.D. Thesis, Auburn University, Alabama. Yuasa, K., Kitancharoen, N., Kataoka, Y. and Al- Murbaty, F.A Streptococcus iniae the causative agent of mass mortality in rabbitfish, Siganus canaliculatus in Bahrain. J. Aquat. Anim. Health 11: