Kemi F2- Laboratorieøvelse nr. 9 Ulla Christensen, Biofysisk Kemi ENZYMKINETIK

Relaterede dokumenter
KemiF2 Enzymkinetik. Ved en overfladisk beskrivelse af denne type enzymkatalyseret reaktion, angives reaktionen som (4):

Forsøgene udføres ved betingelserne: ph 7.6, 0.1 M phosphatpuffer, ved stuetemperatur.

mens mange enzymkatalyserede reaktioner er to-substrat reaktioner (2):

[BESØGSSERVICE INSTITUT FOR MOLEKYLÆRBIOLOGI OG GENETIK, AU]

[BESØGSSERVICE INSTITUT FOR MOLEKYLÆRBIOLOGI OG GENETIK, AU]

Som substrat i forsøgene anvender vi para nitrophenylfosfat, der vha. enzymet omdannes til paranitrofenol

Forsøgene udføres ved betingelserne: ph 7.6, 0.1 M phosphatpuffer, ved stuetemperatur.

Matematiske modeller Forsøg 1

BIOZYMER ØVELSE 1 ENZYMKINETIK

Titel: OPLØSELIGHEDEN AF KOBBER(II)SULFAT. Litteratur: Klasse: Dato: Ark 1 af. Helge Mygind, Kemi 2000 A-niveau 1, s /9-2008/OV

Amalie Avnborg 2.y SRO 18/3-12

Kvantitativ bestemmelse af reducerende sukker (glukose)

Bestemmelse af koffein i cola

Baggrundsmateriale til Minigame 7 side 1 A + B C + D

Reaktionsmekanisme: 3Br 2 + 3H 2 O. 5Br - + BrO H + Usandsynligt at alle 12 reaktantpartikler støder sammen samtidig. ca.

Diffusionsbegrænset reaktionskinetik

Puffere. Øvelsens pædagogiske rammer. Sammenhæng. Formål. Arbejdsform: Evaluering

Kvantitativ bestemmelse af glukose

Bilag til Kvantitativ bestemmelse af glucose

Kemi A. Studentereksamen

Enzymkemi H. C. Ørsted Ungdomslaboratorium Kemisk Institut Københavns Universitet august 2001

PARTIELT MOLÆRT VOLUMEN

Fra spild til penge brug enzymer

Faldmaskine. , får vi da sammenhængen mellem registreringen af hullerne : t = 2 r 6 v

Oprensning af fructofuranosidase fra gær. Matematik. Kemi. LMFK-bladet, nr. 3, maj

Temaøvelse i differentialligninger Biokemiske Svingninger

Impuls og kinetisk energi

Jernindhold i fødevarer bestemt ved spektrofotometri

Kemiøvelse 2 C2.1. Puffere. Øvelsens pædagogiske rammer

2. del. Reaktionskinetik

Undervisningsbeskrivelse

Kemiøvelse 2 1. Puffere

Dialyse og carbamidanalyse

Skriftlig eksamen i Kemi F2 (Fysisk kemi)

BIOTEKNOLOGI HØJT NIVEAU

Kædens længde kan ligger mellem 10 og 14 carbonatomer; det mest almindelige er 12.

UNDERVISNINGS MINISTERIET KVALITETS- OG TILSYNSSTYRELSEN. KeiTii A. Studenterel<saTilen. Onsdag den 3.juni 2015 kl

Undervisningsbeskrivelse

SRP Mat A Kemi B Reaktionskinetik Gülcicek Sacma, 3.x 20. december 2012

Reaktionskinetik

Eksamensopgaver i kemi b uden bilag (med forbehold for censors godkendelse)

Forsøgsundervisning i bioteknologi ved gymnasiale uddannelser

Øvelse 4.2 1/5 KemiForlaget

KemiF2 laboratorieøvelser 2008 Øvelse 3 v.1.4 HOMOGEN KATALYSE. Indledning

Rikke Lund, 3.f Studieretningsprojekt 21/ Reaktionskinetik

Bevægelse op ad skråplan med ultralydssonde.

Energi, Enzymer & enzymkinetik.metabolisme

Titler på eksamensspørgsmål til kemi B maj/juni 2018

Øvelse: Chlorofylindholdet i spinat

Nitratudvaskning i landbrugsafgrøder

Spm. 1.: Hvis den totale koncentration af monomer betegnes med CT hvad er så sammenhængen mellem CT, [D] og [M]?

Kemi A. Højere teknisk eksamen

Kemi A. Studentereksamen

Anvendt BioKemi: MM2. Anvendt BioKemi: Struktur. 1) MM2- Opsummering. Aminosyrer og proteiner som buffere

DNA smeltepunktsbestemmelse

Øvelse: Analyse af betanin i rødbede

Oplægget henvender sig primært til specielt interesserede 3g elever med matematik A og kemi A.

ØVELSE 3 ENZYMMÅLINGER OG ENZYMKINETISKE UNDERSØGELSER

ELISA Kvantitativ bestemmelse af human IgA i brystmælk Elevvejledning.

Kemi A. Studentereksamen indd 1 26/02/

Fysik 2 - Den Harmoniske Oscillator

Anvendelse af Enzymer i Fødevarer

Studienummer: MeDIS Exam Husk at opgive studienummer ikke navn og cpr.nr. på alle ark, der skal medtages i bedømmelsen

Arbejdet på kuglens massemidtpunkt, langs x-aksen, er lig med den resulterende kraft gange strækningen:

Reaktionskinetik - 1 Baggrund. lineære og ikke-lineære differentialligninger. Køreplan

Abstract: Indledning til opgaven Introduktion til emnet Katalase generelt: Enzymers strukturelle opbygning...

Test Canvas: Eksamen i BMB502 Januar 2012

a og b. Den magnetiske kraftlov Og måling af B ved hjælp af Tangensboussole

1: Kemisk kinetik 1. Du skal gøre rede for kemiske reaktioners hastighed, herunder begrebet reaktionsorden.

Kemi A. Studentereksamen. Torsdag den 2Juni 2016 kl

Skriftlig eksamen i Kemi F2 (Fysisk kemi)

a og b Den magnetiske kraftlov Og måling af B ved hjælp af Tangensboussole

Resonans 'modes' på en streng

Regulatoriske mekanismer i energistofskiftet

Kemi A. Højere teknisk eksamen

Algedråber og fotosyntese

I fysik er der forskellige skriftlige discipliner, som du kan læse mere om på denne og de følgende sider.

Kemiøvelse 2 C2.1. Puffere. Øvelsens pædagogiske rammer

Laboratorieforsøg: Phosphats binding i jord

Nitrat sticks AquaChek 0-50 Bilag 3 Nitrat sticks

Vejledning. Prøven Opgavesættet består af 4 opgaver med i alt 16 delopgaver. Alle hjælpemidler er tilladt.

[H 3 O + ] = 10 ph m [OH ] = 10 poh m K s = 10 pks m K b = 10 pk b. m ph + poh = 14 [H 3 O + ][OH ] = m 2 pk s + pk b = 14 K s K b = m 2

Nye metoder til bestemmelse af KCl i halm

Øvelse med tarmkræftceller i kultur.

Røntgenspektrum fra anode

Skriftlig eksamen i Kemi F2 (Fysisk kemi)

Rapport uge 48: Skråplan

Betydning af erstatning af DS metoder med EN metoder - Farvetal

Terminsprøve. Fredag d. 24. marts 2017 Kl

Dæmpet harmonisk oscillator

STUDENTEREKSAMEN MAJ 2007 Vejledende opgavesæt nr. 1 KEMI A-NIVEAU. Xxxxdag den xx. måned åååå. Kl STX071-KEA V

Undervisningsbeskrivelse

Transkript:

1 Kemi F2- Laboratorieøvelse nr. 9 Ulla Christensen, Biofysisk Kemi ENZYMKINETIK Formål: Steady state hastighedsmålinger og kinetisk analyse til undersøgelse af enzymkatalyseret reaktion. Der gøres rede for forudsætningerne for Michaelisligningen. De to sæt V max og K m parameter-værdier, samt ligevægtskonstanten bestemmes for fumarat - L-malat omdannelsesreaktionen katalyseret af enzymet, fumarase. Referencer: P.W. Atkins & J. de Paula: Physical Chemistry, 2002 (7. udg.) s. 909-912. Denne tekst er imidlertid ret lemfældig, derfor gives en forholdsvis grundig redegørelse her: Teori: Enzymer er proteiner med katalytisk funktion. I øvelsen undersøges enzymet, fumarase, som katalyserer en af reaktionerne i citronsyre cyclus, addition af vand til dobbeltbindingen i fumarat med resulterenede dannelse af L-malat (æblesyre): E F + H 2 O M Den mest enkle model for en enzymkatalyserede reaktion antager at et enkelt enzymsubstrat kompleks, EX, er tilstrækkeligt til at beskrive en enzymkatalyseret reaktion, her: k -1 k -2 E + F EX E + M (1) k 1 k 2 EX er en slags sort kasse, hvor omdannelsen fra substrat til produkt foregår. Modellen tager kun to reaktionstrin i betragtning, dannelse af et enzymsubstrat kompleks, EX, og det hastighedsbestemmende (langsomste) trin for omdannelsen af EX til enzym og produkt. En simplificeret beskrivelse af enzymers funktion som katalysatorer, siger at enzymet er i stand til at stabiliserer transition-state for substratets omdannelse til produkt (EX ) hvorved aktiveringsenergien bliver mindre end for den ikke-katalyserede process. Da dette gælder begge veje er det naturligt at sige at enzymerne katalyserer processerne lige godt begge veje. Det betyder naturligvis ikke at reaktionshastighederne er ens begge veje, de vil afhænge af ligevægtens beliggenhed. Her måles koncentrationen af fumarat som funktion af tiden for en række koncentrationer af

2 fumarat henholdsvis L-malat efter tilsætning af fumarase i fravær af det andet substrat. Initialhastighederne, v, defineret som koncentrationsændringen pr. tidsenhed til tiden næsten nul, betsemmes. Michaelis-ligningen fittes til sammenhørende værdier af initialhastigheder og henholdsvis koncentrationen af fumarat og L-malat, så resultaternes overensstemmelse med Michaelisligningen kan undersøges. Model 1, (såvel som mere realistiske modeller, der indeholder flere reaktionstrin), fører under visse betingelser til Michaelis hastighedsligningen. Kravene er, at: 1: eksperimenterne udføres under betingelser, hvor der kan ses bort fra den tilbagegående reaktion (her: k -2 [E][M] = 0), når [M]=0 og k 1 [E][F]= 0, når [F] = 0). Dette opfyldes ved at sørge for at beregningerne baseres på den første del af de målte kurver, (substratkoncentration som funktion af reaktionstid), hvor der kun er dannet meget lidt af den reaktant som principielt skal have koncentrationen nul. Kurvens hældning i denne initiale fase, kaldes initialhastigheden, v, og er den hastighed Michaelis ligningen gælder for. 2: enzymkoncentrationen, [E 0 ], skal være meget mindre end (negligibel i forhold til) substratkoncentrationen, [S 0 ], hvor 0 står for i alt tilsat eller oprindelig. I følge Model 1 haves: d[ex]/dt = k 1 [E][F] k -1 [EX] - k 2 [EX] + k -2 [E][M] (2) hvis f. eks. [M] er nul fås: d[ex]/dt = k 1 [E][F] (k -1 + k 2 )[EX] = k 1 [E 0 ][F] (k 1 [F] + k -1 + k 2 ) [EX]. (3) idet [E 0 ] = [E] + [EX], (4) og [E] 0 << [F] 0, vil [F] kunne forblive næsten konstant (= [F] 0 ) i forhold til [EX] i begyndelsen af reaktionsforløbet. Med konstant [F] haves en simple løsning på ligning (3) : [EX] =[k 1 [E 0 ][F]/(k 1 [F]+k -1 +k 2 )][1-exp (-(k 1 [F]+k -1 +k 2 ) t )] (5) hvor t er reaktionstiden. For [M] = 0 og ved [F] [F] 0 >> E 0 forsvinder eksponentialleddet meget hurtigt. Dette har vist sig at gælde i almindelighed for enzymkatalyserede reaktioner, idet den tilsvarende

3 hastighedskonstant, k (her: = k 1 [F]+k -1 +k 2 ), uanset størrelsen af (k -1 +k 2 ), sjældent kan bringes ned under ca.10 3 s -1 selv ved små substratkoncentrationer, idet [E] 0 <<[S] 0 jo skal overholdes og [E] 0 må have en vis størrelse for at give målelige hastigheder. Efter nogle millisekunder (eller mindre) bliver situationen så: [EX] =k 1 [E 0 ][F]/(k 1 [F]+k -1 +k 2 ) = [E 0 ]]/(1 + (k -1 +k 2 ) / k 1 [F ]) (Steady-state) (6) Michaelis-konstanten K m defineres, som K m = [E][F]/[EX] ved steady-state, alment for et substrat S: K m = [E][S]/[EX]. [S]/K m -forholdet angiver altså steady-state-forholdet mellem [EX] og [E]. Af (4) ses at [EX]/[E] 0 =[EX] /([E] + [EX]) = 1/( [E]/[EX] + 1 ) = 1/(K m /[S] + 1), (7) hvilket sammenholdt med (6) fører til (for den simple Model 1), at K m bliver: K m =(k -1 +k 2 )/k 1. Forbliver [S] rimelig konstant vil steady-state forholdet opretholdes og forbruget af [S] i et tidsinterval vil være lig med produktionen af [P]. Så længe [S] ~[S] 0 er betingelsen [P] ~ 0 også opfyldt, og reaktionens initial steady-state hastighed vil da være, v: v = -d([s])/d t = k 2 [EX] (8) eller (i følge (7)) Michaelis ligningen:: v = k 2 [E] 0 /(1 + K m /[S]) (9) idet grænseværdien for initial steady-state hastigheden for [S] gående mod uendelig, hvor [E] 0 er grænseværdien for [ES], kaldes den maximale hastighed, er V max = k 2 [E] 0. De to parametre: den maksimalt opnåelige hastighed V max og Michaelis-konstanten K m karakteriserer den enzymkatalyserede reaktions initialhastighed som funktion af substratkoncentrationen, [S], ved de nævnte eksperimentelle betingelser. Bemærk at K m må have samme enhed som substratkoncentrationen og at V max må have enheden M/s. De to parametre kan bestemmes udfra en række bestemmelser af v ved forskellige kendte [S]. Eksperimentelt:

4!! Husk I også skal sætte en måling over til øvelse 10 Apparatur og reagenser: Spektrofotometer med arbejdsstation (vejledning foreligger på arbejdsstedet). Termostat, reagensglas, doseringspipetter, 1 cm semimikrokuvetter.. En 10.0 mm stamopløsning af fumarsyre og en 10.0 mm af L-malat, begge i 0.05M phosphatpuffer, ph = 7.0 udleveres. Ved passende fortynding i 10 ml plastrør fremstilles en række fumarsyreopløsninger: [F](mM) 0.25-0.50-1.00-2.00-4.00, og L-æblesyreopløsninger: [M](mM) 0.625-1.25-2.5-5.0-10.0 (den udleverede). Enzymopløsning: der udleveres en færdiglavet opløsning, der skal opbevares isafkølet. Den er fremstillet udfra en suspension af 2.2 mg fumarase/ml, af hvilken en prøve på 20µl er udtaget og fortyndet med 1.50 ml af den ovennævnte phosphatpuffer. Målinger: Som nævnt undersøges her både kinetikken for den enzymkataltyserede omdannelse af fumarat, F, til L-malat (æblesyre), M, - og den modsatte reaktion. Reaktionerne følges spektrofotometrisk ved bølgelængden 270 nm, hvor fumarsyre (men ikke æblesyre) absorberer. Absorbansen, A 270 (= -log 10 (I/I 0 ), hvor I 0 og I er lysintensiteten før og efter passage), er ifølge Lambert-Beer's lov en lineær funktion af de absorberende stoffers A 270 = Σ B ε B [B] l = ε 270,F [F] 1 (10) koncentrationer, idet den molære absorption ε 270 som sagt er nul for æblesyre og lysvejen er 1 cm. Først bringes spektrofotometret til at vise A = 0 med ren pufferopløsning. Dernæst fremstilles en kalibreringskurve, idet absorbansen måles i kuvette med lysvej på 1 cm for rækken af opløsninger med kendt fumarsyreindhold. Absorbansen afbildes som funktion af koncentrationen af fumarsyre og hældningen, ε 270,F, bestemmes ved lineær regression, så absorbans-værdier (og ændringer i absorbans-værdier) kan omregnes til substratkoncentrationer i følge (10) ved division med ε 270,F. Hastighedsforsøgene er tilrettelagt sådan, at der til lige store prøver af rækken af substratopløsninger (enten fumarsyre eller æblesyre) sættes samme (lille) dosis enzym, hvorefter absorbansen omgående registreres som funktion af tiden i 90 s. Der måles initialhastighed to gange for hver substratkoncentration ved en og samme enzymkoncentration. Med pipetter overføres 1500 µl substratopløsning og 50 µl enzymopløs-

5 ning til et reagensglas, som rystes på mixer 2-3 s. Umiddelbart efter (det skulle gerne være initial steady-state hastigheden, der måles) overføres blandingen til kuvetten, der indsættes i spektrophotometret, samtidig med at målingen startes. Ved at bestemme tangenthældningen (da/dt)/ε F = - (d[s]/dt) t=0 til tiden nul, (f.eks. 0-20s) kan man (via kalibreringskurven) beregne initialhastigheden. Husk korrekt enhed. Med de kendte værdier af [S] 0 og de fundne initialhastigheder v = -d[s]/dt bestemmes de kinetiske parametre ud fra et direkte fit til Michaelis ligningen ved anvendelse af et program f. eks. "Grafit" og grafen, v = f([s]), og de resulterende parameterværdier for hvert af substraterne udskrives. Rapporten skal i) i indledningen gøre rede for øvelsens formål. (Tegn de to substrater) ii) i teoriafsnittet skal I ikke udlede Michaelis ligningen, men blot gøre rede for hvilke eksperimentelle betingelser, der er forudsætninger for at Michaelis ligningen kan gælde. Det skal fremgå at steady state ikke nødvendigvis opnås ligegyldigt hvilke eksperimentelle forhold der benyttes. iii) Hvis vejledningen vedlægges som bilag kan afsnittet eksperimentelt blot henvise til denne, bortset fra at eventuelle faktiske afvigelser i det udførte arbejde beskrives. Hvor lang måletid er anvendt til hastighedsbestemmelserne? iv) i resultatafsnittet, indeholde henvisninger og kommentarer til kalibreringskurven, A 270 = f([f]) og de to hastighedsgrafer, som alle skal vedlægges. Den resulterende ε 270,F - værdi angives tydeligt ± usikkerhed. Der skal laves en Tabel over de to sæt opnåede K m og V max - værdier incl. usikkerhed med korrekt angivelse af enheder. Udfra de kinetiske parameterværdier og Michaelis ligningen angives for [F] 0 = 1 mm, hvor meget substrat, der blev brugt på 1 min, når hastigheden antages at have været konstant så længe. Hvor meget blev brugt i det tidsinterval hastigheden er baseret på? Holder forudsætningerne? Kommenter resultatet! Hvis enzymet var blevet fortyndet 10 gange mindre, hvor meget substrat ville da blive omsat? Kommenter resultatet! v) Ligevægtskonstanten for fumarsyres omdannelse til æblesyre kan beregnes, udfra K eq = [M]/[F] = k -1 k -2 /k 1 k 2 =V max,f K M,M / V max,m K M,F K eq -værdien og dens usikkerhed beregnes ud fra jeres egne resultater. Usikkerheden, σ Keq, beregnes ved hjælp af den sidste formel i formel 13 i afsnittet om

6 måleusikkerhed forrest i øvelsesvejledningen til dette kursus (evt. først for de to V max /K M -forhold og derefter for forholdet mellem disse, hvilket faktisk ender med: (σ Keq /K eq ) 2 = (σ Vmax,f / V max,f ) 2 + (σ Km,m / K M,M ) 2 + (σ Vmax,m / V max,m ) 2 + (σ Km,f / K M,F ) 2 ). Og altså: (σ Keq ) 2 = K 2 eq [(σ Vmax,f / V max,f ) 2 + (σ Km,m / K M,M ) 2 + (σ Vmax,m / V max,m ) 2 + (σ Km,f / K M,F ) 2 ] Husk at tage kvadratroden.