Laboratorieprotokol for manuel isolering af DNA fra 0,5 ml prøve



Relaterede dokumenter
Biotechnology Explorer

Regnskovens hemmeligheder

Test dit eget DNA med PCR

Appendix 1: Udregning af mængde cellesuspention til udsåning. Faktor mellem total antal celler og antal celler der ønskes udsås:

Test dit eget DNA med PCR

Protokol for genetisk bestemmelse af ABO blodtyper

Test dit eget DNA med PCR

Test dit eget DNA med PCR

Test dit eget DNA med PCR

Green Fluorescent Protein (GFP) Oprensning af GFP

Tissue_LC_200_V7_DSP og Tissue_HC_200_V7_DSP (brugervalideret til QIAsymphony DSP DNA Mini-kit)

Leucosep rør LTK.615 INDLÆGSSEDDEL. Til diagnostisk anvendelse in vitro PI-LT.615-DK-V3

Biotechnology Explorer

GAPDH PCR modul Manual

Biotechnology Explorer. Regnskovens hemmelighed

DNA origami øvelse DNA origami øvelse

KRIMINALDETEKTIVEN GERNINGSSTEDETS GÅDE PCR

Mælkesyrebakterier og holdbarhed

Kapitel 1 Genteknologi (1/6)

Kædens længde kan ligger mellem 10 og 14 carbonatomer; det mest almindelige er 12.

Biotechnology Explorer

Analyse af proteiner Øvelsesvejledning

DNA-smykke Simpel ekstraktion af DNA fra kindceller fra mennesket, som er velegnet til at bruge i et halssmykke

Mælkesyrebakterier og holdbarhed

DNA origami øvelse. Introduktion. DNA origami øvelse 3 timer 2018

Androstenon-indol-skatol-protokol.

0 Indhold. Titel: Klorofyl a koncentration. Dokumenttype: Teknisk anvisning. Version: 1

DNA origami øvelse DNA origami øvelse

Brugsanvisning IVD Matrix HCCA-portioned

QIAsymphony SP-protokolark

SOP #1, HÅNDTERING AF BLOD

Kvantitativ bestemmelse af reducerende sukker (glukose)

Matematiske modeller Forsøg 1

Isolering af DNA fra løg

Dette er en kladde til et genoptryk af Eksperimentel Genteknologi fra Ideer, rettelser og forslag modtages gerne. Kh Claudia.

Maxwell 16 Blood DNA Purification System

En forsker har lavet et cdna insert vha PCR og har anvendt det følgende primer sæt, som producerer hele den åbne læseramme af cdna et:

Bilag til Kvantitativ bestemmelse af glucose

Plasmidoprensning med kogemetode Oprensning af plasmid DNA med kogemetode for brug til transformation og restriktionsanalyse

SOP for håndtering af standardsæt blod Regionernes Bio- og GenomBank

Kombucha INSTRUKTIONER. Inden du begynder

Øvelse med tarmkræftceller i kultur.

DNA origami øvelse DNA origami øvelse

Jernindhold i fødevarer bestemt ved spektrofotometri

Regnskovens hemmelighed

IVD Bacterial Test Standard

Gerningsstedets gåde Den usynlige sandhed - DNA PCR Basics Kit. Katalog nr EDU

[BESØGSSERVICE INSTITUT FOR MOLEKYLÆRBIOLOGI OG GENETIK, AU]

Aptima Multitest Swab Specimen Collection Kit

Find enzymer til miljøvenligt vaskepulver

Spm. 1.: Hvis den totale koncentration af monomer betegnes med CT hvad er så sammenhængen mellem CT, [D] og [M]?

Teknisk anvisning for marin overvågning

Maxwell CSC Blood RNA Kit

Tag dine gener om halsen. Isoler dit eget DNA, og lav et halssmykke ud af det.

Biologisk rensning Fjern opløst organisk stof fra vand

PAXgene Blood RNA Kit-håndbog

Oprensning af fructofuranosidase fra gær. Matematik. Kemi. LMFK-bladet, nr. 3, maj

Som substrat i forsøgene anvender vi para nitrophenylfosfat, der vha. enzymet omdannes til paranitrofenol

Kvantitativ bestemmelse af glukose

Forsøgsprotokol til larveforsøg: Tilsætning af 3 dage gamle larver til gødning inficeret med patogene bakterier

Titel: OPLØSELIGHEDEN AF KOBBER(II)SULFAT. Litteratur: Klasse: Dato: Ark 1 af. Helge Mygind, Kemi 2000 A-niveau 1, s /9-2008/OV

Proteinelektroforese af GFP Suppleringskit til pglo

Elevvejledning pglo transformation

Banan DNA 1/6. Formål: Formålet med øvelsen er at give eleverne mulighed for at se DNA strenge med det blotte øje.

Bestemmelse af celletal

Ligerings- og transformationsmodul inklusiv plasmidoprensning og restriktionsanalyse

Formål At analysere for myosin i muskelvæv fra fisk ved brug af western blotting

Algedråber og fotosyntese

BRUGSANVISNING CAL J250

SÅDAN GØR DU, NÅR DU KOMMER HJEM

Hjemmelavet ost. Hvis man ikke har prøvet det før, kan det måske være lidt svært at overskue at gå igang med at lave sin egen hjemmelavede ost, så...

E 10: Fremstilling af PEC-solceller

Brugsanvisning, oversættelse

BIOZYMER ØVELSE 2 OPRENSNING AF PROTEINER

Aptima prøvetagningskit til multitestpodning

ELISA Kvantitativ bestemmelse af human IgA i brystmælk Elevvejledning.

Mercodia C-peptide ELISA

B i o k e m i ø v e l s e 1 Regulatoriske mekanismer i det intermediære stoftskifte Udarbejdet af: Matilda Lantz og Elif Bayram

Bestemmelse af koffein i cola

EnVision FLEX, High ph, (Dako Autostainer/Autostainer Plus)

Transkript:

Laboratorieprotokol for manuel isolering af DNA fra 0,5 ml prøve Til isolering af genomisk DNA fra indsamlingssætserierne Oragene - og ORAcollect. Du kan finde flere sprog og protokoller på vores webside www.dnagenotek.com. Følgende protokol beskriver trin for trin, hvordan man isolerer DNA fra en alikvot på 500 µl af en prøve. Medfølgende reagenter prepit L2P (katalog #: PT-L2P) Udstyr og reagenter Mikrocentrifuge med en kapacitet på 15.000 g 1.5 ml pipettespidser (f.eks. Axygen #MCT-150-C) Luft- eller vandinkubator på 50 C Ethanol (95-100 %) ved stuetemperatur Ethanol (70 %) ved stuetemperatur Dna-opbevaringsbuffer: TE (10 mm Tris-HCl, 1 mm EDTA, ph 8,0) eller tilsvarende opløsning Procedure Isolering trin for trin 1. Bland prøven i DNA-Genotek-sættet ved at vende og ryste den blidt i et par sekunder. 2. Prøven inkuberes ved 50 C i en vandinkubator i mindst 1 time eller i en luftinkubator i mindst 2 timer. Bemærk: En luftinkubator kan være at foretrække, da prøverørene kan flyde i et vandbad. Hvis det er nødvendigt at anvende et vandbad, skal man sikre sig, at den del af røret, som indeholder prøven, til stadighed er neddykket i vand. 3. Overfør 500 µl af den blandede prøve til et 1,5 ml mikrocentrifugerør. 4. For hver 500 µl prøve tilsættes 20 µl (1/25 mængde) PT-L2P til mikrocentrifugerøret. Blandes ved vortex i nogle sekunder. Dette sikrer, at tyktflydende prøver bliver ordentligt blandet. Denne varmebehandling er vigtig for at sikre, at DNA en frigøres korrekt, og at nucleaser inaktiveres permanent. Dette inkubationstrin kan gennemføres på et hvilket som helst tidspunkt efter indsamling af prøven og før isolering. Hele prøven skal inkuberes i det originale indsamlingsrør, før den opdeles, for at sikre homogenitet i prøven. Prøven kan inkuberes ved 50 C natten over, hvis det er mest praktisk. Inkubation i luftinkubator kræver længere tid, fordi temperaturudligningen sker langsommere end i en vandinkubator. Resten af prøven kan opbevares ved stuetemperatur eller fryses ned (-15 C til -20 C). Prøven vil blive uklar, idet urenheder og inhibitorer udfældes. C V

Isolering trin for trin 5. Inkuberes på is i 10 minutter. Inkubation ved stuetemperatur kan også anvendes, men vil være lidt mindre effektiv med hensyn til at fjerne urenheder. 6. Centrifugeres ved stuetemperatur i 5 minutter ved 15.000 g. 7. Med pipette overføres den klare supernatant til et nyt mikrocentrifugerør. Kassér pelleten med urenheder. 8. Til 500 µl supernatant tilsættes 600 µl 95-100 % ethanol ved stuetemperatur. Blandes forsigtigt ved 10 gange inversion. 9. Lad prøven stå ved stuetemperatur i 10 minutter, så DNA en udfældes helt. 10. Placér røret i mikrocentrifugen i en kendt orientering. Centrifugeres ved stuetemperatur i 2 minutter ved 15.000 g. 11. Fjern omhyggeligt supernatanten med en pipettespids, og kassér den. Pas på ikke at ødelægge DNA-pelleten. 12. Ethanolvask: Tilsæt forsigtigt 250 µl 70 % ethanol. Lad det stå ved stuetemperatur i 1 minut. Fjern ethanolen fuldstændigt uden at ødelægge pelleten. En længere centrifugeringsperiode (op til 15 minutter) kan være gavnlig med hensyn til at mindske uklarheden (høj A 320 ) i den endelige DNA-opløsning. Pelleten indeholder uklare urenheder. Hvis den ødelægges ved et uheld, bør røret centrifugeres igen. Under blandingen med ethanol vil DNA en blive udfældet. Dette kan vise sig som en klump af DNA-fibre eller som et fint præcipitat, afhængigt af mængden af DNA i prøven. Selv om der ikke er nogen synlig klump, vil der blive fundet DNA, når de følgende skridt udføres omhyggeligt. Inkubation ved -20 C anbefales ikke, idet urenheder da kan udfældes sammen med DNA en. Placér f.eks. hvert rør i mikrocentrifugen, så hættens hængsel peger væk fra rotorens centrum. Efter centrifugeringen kan pelletens position lokaliseres (selv hvis den er for lille til at kunne ses). Den vil befinde sig i bunden af røret under hængslet. Denne pellet indeholder DNA. Hvis pelleten går tabt, går DNA tabt. Hvis røret drejes, så pelleten befinder sig på den øvre del af væggen, kan man uden risiko bevæge en pipettespids langs den nederste del af væggen og fjerne supernatanten fuldstændigt. Supernatanten kan indeholde urenheder og bør fjernes så fuldstændigt som muligt. Overdreven tørring af pelleten kan gøre det vanskeligere at opløse DNA en. Det er vigtigt at fjerne al ethanol fra prøven. Rester af ethanol kan påvirke analysens nøjagtighed. Pas på ikke at ødelægge DNA-pelleten. DNA-pelleten kan være lille. Hvis pelleten skulle gå i opløsning, centrifugeres prøven i 5 minutter ved 15.000 g. Når 70 %-ethanolen er fjernet, kan røret pulscentrifugeres for at gøre det muligt at fjerne ethanolrester. 2

Isolering trin for trin 13. Tilsæt 100 µl TE-opløsning (se side 1) for at opløse DNA-pelleten. Vortex i mindst 5 sekunder. 14. For at sikre fuldstændig rehydrering af DNA en (pellet og smear) inkuberes ved stuetemperatur natten over, fulgt af vortex, eller ved 50 C i 1 time med lejlighedsvis vortex. 15. Muligheder for opbevaring af den fuldstændigt rehydrerede DNA: a) Anbefalet: i TE, i alikvoter ved -20 C til langtidsopbevaring, eller b) i TE ved 4 C i op til 2 måneder. Hvis der ønskes en højere koncentration af DNA, anvendes 50 µl TE. Bemærk: Store mængder DNA med høj molekylvægt kan være langsomme at hydrere (opløse) fuldstændigt. Ufuldstændig hydrering af DNA en er årsag til unøjagtighed ved vurdering af DNA-koncentrationen og til fejl i senere anvendelser, såsom PCR. Ufuldstændig rehydrering af DNA en er årsag til unøjagtighed ved vurdering af DNAkoncentrationen og til potentielle fejl i senere anvendelser, såsom PCR. Hvis renset DNA fryses i TE, vil DNA udfældes. Ved optøning af en prøve af frosset, renset DNA skal man være omhyggelig med rehydreringen som beskrevet i trin 14. Mængdebestemmelse af DNA Fluorescensmetoden Analyser, hvor der anvendes fluorescerende farvestoffer, er mere specifikke end absorbans ved 260 nm til bestemmelse af mængden af dobbeltstrenget DNA (ds-dna) i en DNA-prøve. Vi anbefaler anvendelse af fluorescerende farver, som f.eks. PicoGreen eller SYBR Green I, til at bestemme mængden af ds-dna, da der optræder mindre interferens af forurenende RNA. En billig protokol med anvendelse af SYBR Green I er beskrevet i PD-PR-075, DNA quantification using SYBR Green I Dye and a micro-plate reader 1. Alternativt kan der anvendes sæt, som fås i handelen, f.eks. Invitrogen s Quant-iT PicoGreen dsdna Assay Kit (kat. no. Q-33130). Uanset hvilken protokol, der anvendes, anbefaler vi, at den rensede DNA opløses i forholdet 1:50 med TE-væske, og at der anvendes 5 µl i mængdebestemmelse analysen. Absorbansmetoden Hvis man ønsker at mængdebestemme DNA ved hjælp af absorbans, anbefaler vi, at den rensede prøve først behandles med RNase for at fjerne forurenende RNA, hvorefter RNA-fragmenterne fjernes ved ethanoludfældning af DNA en. En detaljeret protokol findes i PD-PR-040, RNA removal by double-rnase digestion 2. Bemærk, at DNA fra en oral prøve typisk indeholder betydeligt mere RNA end blodprøver. Sørg for, at alkoholudfældet DNA er helt opløst, før absorbansen aflæses. Omregningsfaktor: En absorbans på 1,0 ved 260 nm svarer til en koncentration på 50 ng/µl (50 µg/ml) for ren ds-dna. Sørg for, at absorbansværdierne ligger inden for spektrofotometerets lineære skala. Prøver, som falder uden for den lineære skala, skal genopløses og genmåles. Find yderligere oplysninger i dokumentationen til dit instrument. 3

Metode: 1. Opløs en 10 µl alikvot renset RNase-behandlet DNA med 90 µl TE (1/10 opløsning). Blandes ved forsigtigt at føre pipetten op og ned. Vent til boblerne er forsvundet. 2. Brug TE i referencecellen (blank). 3. Mål absorbansen ved 320 nm, 280 nm og 260 nm. 4. Beregn de korrigerede A 280 - og A 260 -værdier ved at trække absorbansen ved 320 nm (A 320 ) fra A 280 - og A 260 -værdierne. 5. DNA-koncentration i ng/µl = korrigeret A 260 10 (opløsningsfaktor) 50 (omregningsfaktor). 6. A 260 /A 280 -forhold: Dividér korrigeret A 260 med korrigeret A 280. Eksempel 1. Vi antager, at den målte A 320 = 0,025, A 280 = 0,175 og A 260 = 0,295. 2. DNA-koncentrationen af den ufortyndede prøve vil være: (A 260 - A 320 ) 10 [fortyndingsfaktor] 50 [omregningsfaktor] = (0,295-0,025) 10 50 = 0,270 10 50 = 135 ng/μl eller 135 μg/ml 3. Det korrigerede A 260 -/A 280 -forhold vil være: (A 260 - A 320 ) (A 280 - A 320 ) = (0,296-0,025) (0,175-0,025) = 0,270 0,150 = 1,80 Referencer 1 Bestemmelse af mængden af DNA ved anvendelse af fluorescens/dnase (F/D)-analyse. Erstattet af mængdebestemmelse af DNA med anvendelse af SYBR Green I farve og en mikropladelæser. DNA Genotek. PD-PR-075. 2 Fjernelse af RNA ved dobbelt RNase-digestion. DNA Genotek. PD-PR-040. Teknisk support har åbent mandag til fredag (9.00-17.00 EST): Ring gratis (Nordamerika): 1.866.813.6354, option 6 Alle andre lande: 613.723.5757, option 6 E-mail: support@dnagenotek.com Oragene DNA og ORAcollect DNA sælges ikke i USA. Oragene DISCOVER er kun beregnet til forskningsbrug, ikke til anvendelse i diagnostiske procedurer. Nogle DNA Genotek-produkter fås muligvis ikke i alle geografiske regioner. Oragene, prepit og ORAcollect er registrerede varemærker tilhørende DNA Genotek Inc. Alle andre mærker og navne indeholdt heri er de respektive ejeres ejendom. Alle DNA Genotek-protokoller, -hvidbøger og -anvendelsesnoter findes på vores webside www.dnagenotek.com under support. 4

Kortfattet vejledning: Laboratorieprotokol for manuel rensning af DNA fra 0,5 ml prøve Isoleringstrin 1. Bland prøven i DNA-Genotek-sættet ved at vende og ryste den blidt i et par sekunder. 2. Prøven inkuberes ved 50 C i en vandinkubator i mindst 1 time eller i en luftinkubator i mindst 2 timer. 3. Overfør 500 af prøven til et mikrocentrifugerør. 4. Tilsæt 20 PT-L2P og bland ved vortex i et par sekunder. 5. Inkuberes på is i 10 minutter. 6. Centrifugeres ved stuetemperatur i 5 minutter ved 15.000 g. 7. Med pipette overføres størstedelen af den klare supernatant til et nyt mikrocentrifugerør. Kassér pelleten. 8. Tilsæt 600 RT 95-100 % ethanol til den klare supernatant. Blandes forsigtigt ved 10 gange inversion. 9. Lad prøven stå ved stuetemperatur i 10 minutter, så DNA en udfældes helt. 10. Placér røret i mikrocentrifugen i en kendt orientering. Centrifugeres ved stuetemperatur i 2 minutter ved 15.000 g. 11. Fjern forsigtigt supernatanten med pipette og kassér den. Pas på ikke at ødelægge DNA-pelleten. 12. Tilsæt 250 70 % ethanol, og lad det stå ved stuetemperatur i 1 minut. Fjern ethanolen fuldstændigt uden at ødelægge pelleten. 13. Tilsæt 100 TE-opløsning, og vortex prøven i mindst 5 sekunder. 14. Inkubér natten over ved stuetemperatur eller ved 50 C i en time med lejlighedsvis vortex. 15. Opbevaring: I alikvoter ved -20 C for langtidsopbevaring (anbefalet) eller ved 4 C i op til 2 måneder. 5