om ion- Alle celler er begrænset af en cellemembran, som

Transkript

1 42 BIOFYSIK om ion- Alle celler er begrænset af en cellemembran, som omslutter cellen og sikrer, at cellens indre er beskyttet fra omgivelserne. Forskellige celletyper har forskellige slags membraner, men fælles for dem alle er, at de er opbygget af et dobbeltlag af lipidmolekyler, hvori der er indbygget en lang række forskellige proteiner. Proteinerne i membranen er cellens arbejdsheste. De udfører de mange forskellige funktioner, som er nødvendige for, at cellen kan opretholde sine livsfunktioner. Nogle proteiner transporterer næringsstoffer ind i cellen og affaldsstoffer ud. Andre virker som en slags antenner, der kan opfange signaler eller sende signaler mellem cellen og dens omgivelser. Nogle af de allervigtigste membranproteiner er ionpumperne, som sikrer og kontrollerer små ladede molekylers transport over cellemembranen. Ionpumperne sørger for, at cellen opretholder det rette kemiske miljø indeni og opbygger de nødvendige elektriske felter, der kan virke som drivkraft for cellens funktioner, fx for nervecellers aktivitet. Én af disse pumper er natrium-kalium (Na + /K + ) pumpen, som blev opdaget af den danske forsker Jens Chr. Skou i 1957, en opdagelse han blev hædret for med Nobelprisen i kemi i Fluktuerende liposom (diameter = 35 μm) med aktive Na + /K + -pumper. Fluktuationerne skyldes Brownske bevægelser. Grafi k: Jonas Drotner Mouritsen Na + /K + -pumpen virker både som en ionpumpe og som et enzym, dvs. en katalysator, som omsætter cellens kemiske brændstof ATP (adenosin-trifosfat) til den energi, der medgår til at pumpe tre natriumioner (Na + ) ud af cellen og to kaliumioner (K + ) ind i cellen for hvert ATP-molekyle, der hydrolyseres. Na + /K + -pumpen findes udelukkende hos dyreceller, og den er livsvigtig for opretholdelse af et konstant volumen. Hvis vand trænger ind i cellen, og den

2 43 Membranen sladrer pumpers funktion Na+/K+-pumpen fi ndes i alle cellemembraner fra dyr og holder styr på fordelingen af natrium og kalium på hver side af membranen. Ny forskning viser, at når Na+/K+-pumpen pumper, påvirker den membranen på en måde, som sladrer om detaljer i pumpens funktion. derved svulmer, sprænges cellen, da den bløde cellemembran ikke kan modstå et overtryk. Dette er i modsætning til planteceller, der udenpå cellemembranen har en cellevæg af cellulose, som kan modstå meget store overtryk i cellen. Kommunikation mellem protein og membran En vigtig bestanddel af membranen er lipider, der er såkaldt amfi fi le molekyler, dvs. at de i den ene ende tiltrækkes af vand (de er hydrofi le), og i den anden ende er de som olie, der skyr vand (de er hydrofobe). I vand slutter de sig derfor helt af sig selv sammen i lipiddobbeltlag, som kan danne lukkede kugleskaller med vand på begge sider. Sådanne lukkede skaller kaldes liposomer. Et liposom er den simpleste model af en celle, som dog ikke kan udføre andre funktioner end at holde det indre adskilt fra det ydre. Fordi det indre af lipiddobbeltlaget er som olie, er det meget vanskeligt for specielt vandopløselige stoffer, som for eksempel uorganiske salte med natriumeller kaliumioner, at trænge gennem laget. Af samme grund skal proteiner og specielt ionkanaler og ionpumper have en helt særlig opbygning for at kunne befinde sig indlejret i membraner: de skal have et midterstykke, som er olieagtigt, men med ender, som er opløselige i vand. Vi siger, at membranproteinerne er hydrofobisk tilpasset lipidmembranen. Denne hydrofobe tilpasning udgør en slags mekanisme, med hvilken membranen og de indlejrede proteiner gensidig kan påvirke hinanden. Vi taler om lipid-proteinvekselvirkninger. Lipid-proteinvekselvirkninger er af stor betydning for proteinernes funktioner. På den ene side kan ændringer i lipidmembranen, der for eksempel skyldes kemiske stoffer (fx visse lægemiddelstoffer) eller ydre påvirkninger (fx stress og surhedsgrad), medvirke til, at proteinets funktion påvirkes. På den anden side kan proteinet, mens det udfører sine funktioner, påvirke lipidmembranen, for eksempel hvis proteinet ændrer form eller hydrofob tilpasning. Modeller viser vejen I et forsøg på at afklare, hvordan proteiner og lipidmembraner gensidigt påvirker hinanden, bruger forskerne forskellige modelsystemer, som er tilstrækkeligt simple til, at man kan foretage kvantitative målinger af lipid-proteinvekselvirkningerne, men samtidig tilstrækkeligt realistiske til at de kan lede til ny indsigt. Et sådant lipid-protein modelsystem er liposomer opbygget af nogle få forskellige slags lipidmolekyler, der kan danne liposomer. I disse liposomer indbygges så proteiner, som oprenses fra levende celler. Det er muligt at oprense Na + /K + -pumper fra forskellige celle- og vævstyper. Her benytter vi os af, at naturen allerede har opkoncentreret Na + /K + -pumper i visse væv og organer. Det gælder fx hjerne og nyre, der er meget rige på Na + /K + -pumper (meget aktive organer). Vi bruger også saltkirtler fra pighajer, der hjælper hajen med at komme af med det NaCl, den indtager, når den har spist. Saltkirtlerne er på størrelse med en lillefinger og indeholder næsten 50 % Na + /K + -pumper. Disse proteiner kan indbygges i små liposomer bestående af to slags lipidmolekyler, hvoraf den ene slags er kolesterol, som er en vigtig komponent i alle cellemembraner. Liposomerne er ca. 100 nanometer i diameter, og man kan ved biokemiske analyser Forfattere Hélène Bouvrais, phd og postdoc, Institut de Génétique et Développement de Rennes (IGDR), Rennes, Frankrig helene.bouvrais@univrennes1.fr Flemming Cornelius, dr. scient. og lektor i biofysik, Institut for Biomedicin- Fysiologi og Biofysik, Aarhus Universitet fc@biophys.au.dk John H. Ipsen, phd og lektor i fysik ved Institut for Fysik, Kemi og Farmaci, Syddansk Universitet ipsen@memphys.sdu.dk Ole G. Mouritsen, dr. scient. og professor i biofysik, Institut for Fysik, Kemi og Farmaci, Syddansk Universitet. ogm@memphys.sdu.dk

3 44 BIOFYSIK vise, at pumperne forsat er enzymatisk aktive i liposomerne. Disse små liposomer, som er meget mindre end, hvad man kan se i et lysmikroskop, kan nu tvinges til at smelte sammen i meget store liposomer ved at udsætte dem for svingende elektriske felter. Hermed dannes kæmpestore liposomer, som typisk er 20-40μm i diameter og derfor synlige i et lysmikroskop. Småt og hele tiden i bevægelse Problemet med at studere ting, som er meget små, fx molekyler og ultratynde lipidmembraner, er, at de hele tiden er i bevægelse. Molekylerne udfører, hvad vi kalder Brownske bevægelser, som skyldes, at vandmolekyler hele tiden støder ind i dem, så proteinerne komme til at opføre en tilfældig dans. Desuden er lipidmembraner ofte så bløde, at de også kommer til at udføre en slags Brownske bevægelser. De ændrer simpelthen form på en tilfældig måde, når vandmolekylerne støder ind i dem. Disse tilfældige bevægelser er mere voldsomme, jo højere temperaturen er. Det kan derfor synes som en stor ulempe for nærmere studier, at membranerne udfører disse uregelmæssige, såkaldt termiske bevægelser. Denne ulempe kan imidlertid vendes til en fordel, idet man kan udnytte de termiske bevægelser til at lære noget om membranernes mekaniske egenskaber. Ved at analysere, hvorledes liposomerne ændrer form gennem tiden, kan man fx bestemme membranens stivhed. Stivheden er et udtryk for, hvor meget energi, der skal til for at deformere membranen. Liposomer, der fluktuerer meget i form, er bløde, hvorimod liposomer, som fluktuerer meget lidt og næsten er perfekt kugleformede hele tiden, er stive. Vi skal nu se på, hvordan man ved analyse af liposomers termiske fluktuationer kan lære noget om, hvordan Na + /K + -pumper påvirker membranen, mens de pumper ioner over membranen. Desuden skal vi se, at denne analyse afslører, at membranerne sladrer om pumperne. Vi kan helt uden at studere pumperne direkte alligevel lære om deres funktion ved at lave eksperimenter, der afslører, hvordan aktive pumper påvirker membranens stivhed og fluktuationsmønster i tid og rum. Hvad membranernes fluktuationer fortæller Eksperimenterne er i princippet simple, men dog teknisk meget krævende både i laboratoriet og specielt i den efterfølgende matematiske analyse af de eksperimentelle data. For at lykkes kræver et sådant projekt et tæt samarbejde mellem på den ene side teoretiske fysikere og på den anden side eksperimentelle fysisk-kemikere og biokemikere med forstand på enzymers funktion. Fremgangsmåden omfatter sammenlignende studier af 1 liposomer uden pumper, 2 liposomer med pumper, som ikke er aktive, dvs. uden ATP tilstede, og 3 liposomer med pumper, som er aktive pga. tilstedeværelsen af ATP. Det første resultat viser, at sammenligner man membraner helt uden pumper med membraner, som har inaktive pumper, så er der ingen forskel på Cellemembran Cellemembraner består af forskellige fosfolipider (runde hoveder med to haler) arrangeret i et dobbeltlag, polysaccharider (grønne grene) og membranproteiner (sorte klumper). Cellemembraner indeholder typisk tusinder af forskellige slags lipid- og proteinmolekyler. På indersiden af membranen findes et polymerskelet, som giver cellen form (røde slanger).

4 45 membranernes fluktuationer. Det betyder, at ved de meget små koncentrationer af pumper, vi benytter, er membranens stivhed ikke ændret. Men så snart pumperne aktiveres ved at tilsætte ATP, ændrer liposomets fluktuationer sig. Ændringen kan ikke observeres med det blotte øje i mikroskopet, men den matematiske analyse viser det tydeligt: membranerne bliver omkring 30 % blødere. Tilsyneladende har den aktive pumpe, mens den pumper ioner hen over membranen, en effekt på membranen, muligvis fordi Na + /K + -pumpen ændrer form. Disse formændringer vil så mekanisk påvirke lipidmolekylerne i membranen, som derved bliver mere uordnet og blød. Samtidig sker der noget meget overraskende med det tidslige forløb af membranfluktuationerne. De bliver meget stærkere korreleret, dvs. membranen synes at have en hukommelse gennem længere tid om, hvad den foretog sig tidligere. Sådanne tidsmæssige korrelationer kan analyseres matematisk og føre til tal for, hvad der er karakteristiske tider, såkaldt tidskonstanter, for det observerede fænomen. Disse tidskonstanter er normalt afhængige af detaljer, for eksempel liposomets størrelse og graden af indre spændinger i liposomet. Men det har vist sig, at der i analysen af mange forskellige liposomer med indbyggede aktive pumper fremkommer en tidskonstant, som er robust og ikke afhænger af detaljer ved det aktuelle liposom. Den fundne tidskonstant er omkring 0,5 sekund. Det er lidt af et mirakel, at det praktisk har vist sig muligt at isolere en sådan robust tidsskala fra et så komplekst eksperiment, der her er tale om. Spørgsmålet er så, hvad de 0,5 sekunder fortæller os. Membranen sladrer For at svare på det spørgsmål skal vi have fat i den viden, som biokemikere, der har arbejdet med Na + / K + -pumpen gennem mange år, har erfaret ved analyse af pumpen som et enzym. Deres arbejde viser, at det langsomste, og dermed tidsbegrænsende trin i den reaktionscyklus, som pumpen gennemgår, omfatter afgivelsen af en fosfatgruppe. Dette trin kan man ved biokemiske forsøg vise er karakteriseret af en tidsskala på omkring 0,4 sekund, dvs. meget tæt på det, som membranfluktuationerne rapporterer om. Det er derfor nær- Lipidmolekyler er amfifile molekyler, som har vandopløselige hoveder (runde kugler) og i dette tilfælde to fedtopløselige haler (fedtsyrer). Lipider i vand danner spontant lipiddobbeltlag, som er membraner, der kun er ca. 5nm tykke. Dobbeltlagene lukker omkring sig selv og kan danne såkaldte vesikler eller liposomer, der er små kugleskaller af lipider med vand på begge sider. I disse skaller kan man indbygge funktionelle membranproteiner, fx Na + /K + -pumper. + vand Lipsom-med-pumper Skitse af liposom med indbyggede Na + /K + -pumper. Liposomets membran består af fosfolipider (gul) og kolesterol (rød). Pumpen kan enten være orienteret som i cellen med ydersiden udad (right-side out, r-o) eller modsat (inside out, i-o). Ved at tilsætte ATP (adenosin-trifosfat) til ydermediet aktiveres alene i-o pumperne, hvor bindingsstedet for ATP er eksponeret til ydersiden. ATP nedbrydes herved til ADP (adenosin-difosfat) og uorganisk fosfor (Pi). Hvis der er Mg 2+, Na + og K + til stede, vil i-o pumperne transportere Na + ind i liposomet og K + ud af liposomet, modsat i cellen. ATP er et hydrofilt molekyle, og det kan derfor ikke trænge ind i liposomet.

5 47 liggende at slutte, at netop dette trin, som også fra strukturelle studier vides at omfatte en ændring af pumpens molekylære form, er det, der er ansvarlig for ændringer i membranens fluktuationer. Hermed har vi lært noget om en molekylær egenskab ved et komplekst molekyle, dvs. noget der karakteriserer den mikroskopiske verden, ved med biofysiske teknikker at studere fluktuationer og mekanik af en membran, dvs. noget, der karakteriserer den makroskopiske verden. Nu kunne man så sige, at vi har fundet et resultat, man kendte i forvejen. Men perspektiverne af dette resultat er selvfølgelig, at man på denne baggrund kan gå videre og studere Na + /K + -pumpen med biofysiske teknikker under omstændigheder, hvor man ikke kender resultatet, fx for pumper, som er defekte (ved visse sygdomme), eller som er påvirket af lægemiddelstoffer (fx kemoterapeutiske stoffer). Endelig foreligger der den mulighed at bruge membranfluktuationer til at studere funktionen af membranproteiner, om hvis funktion vi endnu ingen viden har. Læs mere Bouvrais H, F Cornelius, JH Ipsen & OG Mouritsen Intrinsic reaction-cycle time scale of Na +,K + -ATPase manifests itself in the lipid-protein interactions of non-equilibrium membranes. Proc. Natl. Acad. Sci. USA 109, Mikroskopibilleder af et stort liposom (diameter = 42μm), som består af et lipiddobbeltlag, hvori der er indbygget Na + / K + -pumper. Liposomet er observeret på seks forskellige tidspunkter med 40 mikrosekunders interval. Da lipiddobbeltlaget kun er 5nm tykt, kan man ikke se selve laget, men kun kontrasten af omridset. Tilsvarende er proteinerne alt for små til at kunne ses i et lysmikroskop. Liposomet fluktuerer i form på grund af Brownske bevægelser, som skyldes, at vandmolekylerne, som diffunderer tilfældigt rundt, bestandig bumper ind i lipidmembranen. Når pumperne bliver aktive ved tilstedeværelse af ATP, forstærkes fluktuationerne, som kan måles ved detaljerede analyser af liposomets omrids, og hvordan det varierer gennem tiden.